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抗體生物素化標(biāo)記

最近更新時(shí)間:2011-3-10

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詳細(xì)介紹:

抗體的生物素化標(biāo)記

抗體的生物素化標(biāo)記,可使抗體或其它蛋白質(zhì)的ε-氨基通過手臂與?;纳锼毓矁r(jià)結(jié)合。其后,生物素化的分子可應(yīng)用酶標(biāo)-親和素或熒光染料-鏈霉親和素復(fù)合物來檢測。小分子的水溶性生物素對細(xì)菌蛋白鏈霉親和素具有高度親和力是本法的設(shè)計(jì)基礎(chǔ)。

試劑及儀器

NHSB:N-羥基琥珀酰亞胺生物素

0.1 mol/L碳酸氫鈉緩沖液,pH 8.0

雙蒸水(注意去除游離氨基),用以配制碳酸氫鈉緩沖液或硼酸緩沖液

DMSO(二甲亞砜,有毒試劑)

1 mol/L NH4Cl

疊氮鈉(有毒試劑)

10g/L牛血清白蛋白(W/W)PBS液

分子篩柱(如G25)

電磁攪拌器

透析袋(MW CO 8000)

鋁鉑

微量移液器

操作步驟

1.將待生物素化的蛋白質(zhì)用0.1 mol/L碳酸氫鈉緩沖液(pH 8.0)或0.5 mol/L硼酸緩沖液(pH 8.6)稀釋到1mg/ml,一般實(shí)驗(yàn)室應(yīng)用的生物素化體積為1-2.5ml
2.交互用0.1 mol/L碳酸氫鈉緩沖液(pH 8.0)或0.5 mol/L硼酸緩沖液(pH 8.6),對蛋白質(zhì)充分透析;
3.用1ml DMSO 溶解NHSB 1mg
4.向1ml蛋白質(zhì)溶液(即含蛋白質(zhì)1mg)加入120μl NHSB溶液(即含NHSB 120 μg)
5.在室溫下持續(xù)攪拌,保溫2-4小時(shí)
6.加入9.6μL1 mol/L NH4Cl (每25 μg NHSB 加1 μl),在室溫下攪拌10分鐘
7.在4℃,對PBS充分透析,以除去游離的生物素

8.將樣品上1ml的分子篩柱,以PBS緩慢洗脫,收集1ml/管,蛋白質(zhì)在1-3ml之間洗下
9.zui后,樣品加入疊氮鈉(終濃度0.5g/L)及1.0g/L BSA。將結(jié)合產(chǎn)物置4℃,避光保存,亦可加入50%重蒸甘油,置―20℃保存。

質(zhì)量監(jiān)測

與酶-或熒光染料-結(jié)合的親和素、鏈霉親和素或中和親和素(neutravidin),通過標(biāo)準(zhǔn)方法(Western blotting 或免疫熒光染色法)測定交聯(lián)率。
 

實(shí)驗(yàn)要點(diǎn)及說明

1.如在反應(yīng)混合液中有疊氮鈉或游離氨基存在,會抑制標(biāo)記反應(yīng)。因此,蛋白質(zhì)在反應(yīng)前要對0.1 mol/L碳酸氫鈉緩沖液或0.5 mol/L硼酸緩沖液充分透析
2.所用的NHSB及待生物素化蛋白質(zhì)之間的分子比按蛋白質(zhì)表面的ε-氨基的密度會有所不同,選擇不當(dāng)則影響標(biāo)記的效率,應(yīng)先用幾個(gè)不同的分子比來篩選zui適條件

3.用NHSB量過量也是不利的,抗原的結(jié)合位點(diǎn)可能因此被封閉,導(dǎo)致抗體失活

4.由于抗體的氨基不易接近可能造成生物素化不足,此時(shí)可加入去污劑如Triton X-100,Tween 20等。
5.當(dāng)游離ε-氨基(賴氨酸殘基的氨基)存在于抗體的抗原結(jié)合位點(diǎn)時(shí),或位于酶的催化位點(diǎn)時(shí),生物素化會降低或損傷抗體蛋白的結(jié)合力或活性。此時(shí),應(yīng)試用其它交聯(lián)方法
6.生物素還可能與不同的功能基團(tuán),如羰基、氨基、巰基、異咪唑基及苯酚基,也可與糖基共價(jià)結(jié)合
7.交聯(lián)反應(yīng)后,應(yīng)充分透析,否則,殘余的生物素會對生物素化抗體與親和素的結(jié)合產(chǎn)生競爭作用
8.在細(xì)胞的熒光標(biāo)記實(shí)驗(yàn)中,中和親和素的本底低,但由于鏈霉親和素含有少量正電荷,故對某些細(xì)胞可導(dǎo)致高本底

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