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怎樣制備細胞核

閱讀:213          發布時間:2015-8-26
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                                                              細胞核制備試劑盒詳細說明

一、 試劑盒說明

在破碎組織細胞時加入活化劑,幫助裂解細胞,反復振蕩或使用剪切力釋放細胞核,然后在溫和條件下低速 離心收集細胞核。制備在 3060 分鐘內完成,無需特殊設備,簡便易行,重復性好。適用于從組織塊、貼 壁或懸浮培養細胞制備完整的高純度細胞核。制備的細胞核仍然保持其在細胞內所具有的形狀和大小,是進 行細胞核組分亞分級和相關實驗的理想材料,是研究蛋白核轉位、DNA-蛋白相互作用,以及進行 Western Blot 和免疫共沉淀的理想材料。


二、 試劑盒組份



組份


50 tests


儲存溫度

Lysis Buffer

100 mL




2-8

Reagent A

10 mL

Medium Buffer A

10 mL

Medium Buffer B

20 mL

Store Buffer

5 mL


三、 使用注意事項

1. 為保證獲得完整的細胞核,全程低溫操作,將樣品管放在冰水浴而不是碎冰塊中??焖偻瓿刹僮鳎⒘?制備比大規模制備操作更方便和快速,因而更容易獲得完整的細胞核。

2.      破碎細胞是關鍵環節。與組織塊相比,培養細胞特別是貼壁培養細胞較難破壁,必要時將勻漿混合物 3

次或多次通過 22 號針頭剪切破碎細胞,或用小容積玻璃勻漿器、間隙嚴密的研杵上下研磨培養細胞

20~40 次。并不時用相差顯微鏡下檢查未裂解細胞應少于 5%。

3.      以離心力 g 計算正確的離心速度,不同的離心機可據此計算離心速度。

4.     進行 Western Blot 2D-膠電泳,可先用小體積的水重懸核沉淀,然后加入樣品緩沖液,如果直接用含 SDS 樣品緩沖液裂解核將釋放大量粘稠的 DNA 使樣品難以分散。反復加熱變性有助于 DNA 斷裂,可 通過細針頭反復抽吸打斷 DNA。


四、操作方法


A. 培養細胞裂解

1.     貼壁細胞需要消化或機械刮下細胞,懸浮細胞可直接離心,PBS 洗滌,800 × g, 5min 離心收集細胞, 計數,并估計細胞沉淀的體積。每次提取需要 1~2 × 107 細胞。通常每 1 × 107 細胞的沉淀體積約

100 μL;

2.      加入 10 倍于細胞沉淀體積的 1 mL 冰預冷的 Lysis Buffer,振蕩重懸細胞;

3.      加入 1/20 體積約 50 μL Reagent A,振蕩混合;

4.      細胞懸液放冰水10~20 分鐘,3~5 分鐘振蕩細30 秒。在相差顯微鏡下檢查游離的應該達

95%而未裂解細胞應少于 5%。否則繼續冰浴和強烈振蕩,或置于玻璃勻漿器均漿數十次后再鏡檢。

B. 組織塊破碎和細胞裂解

1.      100~500 mg 鮮組織如肝臟、腦,PBS 洗,用剪刀剪為碎塊放入小容量玻璃勻漿器內。估計


組織塊總體積。加入 1 ml 冰預冷的 Lysis Buffer

2.      加入 1/20 體積約 50 μl Reagent A,混合;

3.      上下研磨組織 20 次。在相差顯微鏡下檢查游離的核應該達到 95%而未裂解細胞應少于 5%。否則繼續 勻漿;

4.      用濾紙或雙層紗布過濾組織勻漿裂解物

C. 細胞核制備

1.      將組織或細胞勻漿物轉移到離心管。4 oC1000 × g 離心 3 min 沉淀細胞核,棄上清;

2.      10 倍于胞核體積(約 0.5 mL Lysis buffer 重懸核,4 oC,1000 × g 離心 3 min,棄上清。

3.      加入 0.5 mL Medium Buffer A 重懸沉淀制成懸液;

4.      將另一預冷的新離心管內加入 1 mL Medium Buffer B,將步驟 3 的懸液置于 Medium Buffer B 之上,4

oC1000 × g 離心 10min 棄上清,得較純的細胞核沉淀,此時在相差顯微鏡下細胞核應該游離分散 在清亮背景下;

5.      Store Buffer 重懸細胞核,進行下一步實驗或-70 oC 保存。




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