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撫生試劑-做好免疫組化染色必須注意的問題
閱讀：98 發(fā)布時間：2014-4-16做好免疫組化染色必須注意的問題
一、為達(dá)到免疫組織化學(xué)技術(shù)的要求，組織固定越新鮮越好。
在免疫組化zui后結(jié)果的判斷時，常可見到均勻一片的似非特異性染色的現(xiàn)象，經(jīng)多方研究認(rèn)為，它是一種假性非特異性的染色。因?yàn)槟[瘤組織中含有的抗原較易發(fā)生擴(kuò)散彌散，腫瘤細(xì)胞無限制的生長和生長過速，導(dǎo)致腫瘤中間部分組織血液供給困難，造成缺血壞死，壞死細(xì)胞中的抗原由于機(jī)體的作用，可以被均勻地散布于細(xì)胞與細(xì)胞間的間質(zhì)，這是抗原發(fā)生彌散的一種方式。另一種抗原彌散的方式就是，由于組織沒有及時的固定所引起的。離體的組織不及時固定，組織就會自溶，抗原就會擴(kuò)散，這是一非常普通的常識，但要做好卻是極不容易。標(biāo)本從外科切除到浸入固定液需要經(jīng)過一段時間，在這段時間里，有的抗原就可以發(fā)生擴(kuò)散。雖然已浸入了固定液，但標(biāo)本較大，固定液的量又不足，當(dāng)然由于固定液的滲透需要時間，當(dāng)滲入到組織之中時，中間的細(xì)胞已發(fā)生了變化，抗原也隨著發(fā)生擴(kuò)散，這種現(xiàn)象在產(chǎn)酶多的器官是比較明顯的，如胃癌，當(dāng)切除后標(biāo)本較大，雖然在手術(shù)室期間已放入了固定液，但固定液要透過肌層達(dá)到胃粘膜面起碼需要幾個小時的時間，當(dāng)固定液發(fā)揮作用時，組織已經(jīng)發(fā)生變化。因此，這了達(dá)到免疫組織化學(xué)染色的要求，對于離體的組織盡量快的進(jìn)行固定，有條件的應(yīng)將其剖開，早取材，早固定。
二、組織脫水必須*干凈
組織塊取材不能太大過厚，才能較好地完成脫水的過程。如果取材太厚，在較短的時間內(nèi)脫水不*，將可引起一系列的問題，比如浸蠟不*，切片不好完成，切不完整。由于先天不足，導(dǎo)致后來切片染色的脫落，造成染色的失敗，或者由此反復(fù)操作，造成年人力物力的浪費(fèi)，造成病理報(bào)告的延期發(fā)出等。因此，對取材的要求是除了要求要有藝術(shù)性外，即平整、外觀好看，還要求適中。
三、切片必須完整、均勻、平展、無鄒折
應(yīng)用于免疫組織化學(xué)染色的切片，對切片的質(zhì)量要求較高，切片必須完整，平展、無汽泡，無鄒折，這樣有利在染色時的沖洗，有利于切片的牢固附貼。如果切片不平展，免疫組化染色后，可出現(xiàn)染色不均勻的現(xiàn)象，顏色深淺不一， 不平。如果切片有汽泡切片在烘烤時，由于汽泡的破裂影響了汽泡周圍的組織，在其周圍可觀察到深淺不一的染色。如果切片有鄒折，免疫組化染色后，在鄒折的地方有深淺不一的顏色，這是一種假陽性，容易引走混淆。
四、切片的附貼必須牢固，必須使用合適的粘貼劑。
免疫組織化學(xué)染色前的前期準(zhǔn)備工作，就是必須對新的載玻片進(jìn)行處理，新的載玻片表面看起來很干凈，有人認(rèn)為不需要進(jìn)行任何的處理，都能夠適合使用，這是一種錯誤的想法。新出廠的載玻片，表面復(fù)蓋著開一層油脂樣的物質(zhì)，如果不加以處理，對切片的附貼是極為不利的。我們的做法是：新的載玻片，放于玻璃清洗液中浸泡4小時，然后取出，經(jīng)自來水*沖洗后，浸入酒精中達(dá)2小時以上，取出擦干備用或烘干也可。然后再將載玻片浸入了－氨基－三乙氧基－硅烷（3－Aminopropyl triethoxy-silane）的稀釋液（1：50用丙酮或無水乙醇稀釋都可以）中硅化10分鐘，后經(jīng)無水乙醇洗2次，烘干即可使用。
五、切片必須烘烤附貼牢固，既要經(jīng)得起抗原修復(fù)時高溫的作用而不使輕易脫片，又不至于破壞抗原。
應(yīng)用于免疫組化染色的切片。由于整個過程需經(jīng)幾個階段的處理，如抗原修復(fù)時抗原修復(fù)液的沸騰且需持續(xù)十幾分鐘，PBS的反復(fù)沖洗，有的甚至于4℃冰箱中孵育達(dá)十幾小時。因此，對切片的質(zhì)量要求很高，尤其是切片的附貼程度。以往有人主張切片在60℃以下烘烤30-60分鐘即可按此進(jìn)行結(jié)果是切片掉片嚴(yán)重，切片松動率占100%。切片究竟烘烤多長時間才合適，既不脫片和適合各項(xiàng)要求，又不至于破壞抗原。幾組實(shí)驗(yàn)［］診斷P173認(rèn)為，切片在60℃的恒溫干燥箱中烘烤2-5小時zui為合適。這是因?yàn)椋嚎乖赡褪苋绱说臏囟龋±砜埔话闶褂玫氖灒淙埸c(diǎn)在60℃左右，組織浸蠟時，浸蠟箱中的溫度，一般都調(diào)在65℃左右，組織在這樣溫度中要浸泡2小時以上，才能達(dá)到*地浸蠟。組織中的抗原已經(jīng)受了65℃的溫度考驗(yàn)，保存下來的抗原，都已具有耐熱性。另外，經(jīng)上述時間烘烤出來的切片，附貼牢固，抗原保存好，染色成功率達(dá)100%，保證了病理診斷的及時性和準(zhǔn)確性。
特需要注意的是，不管是應(yīng)用于診斷的切片還是研究用的切片，烘烤后應(yīng)盡快進(jìn)行染色。如果切片切完后，遲遲不進(jìn)行染色，存放于室溫中或工作冰箱中，切片中的抗原將會隨著時間的延長而逐漸消失，甚至出現(xiàn)假陰性。原則上是新鮮切片，即行染色，染多少張切多少張，這樣才能盡可能的保存表達(dá)更多的抗原。
六、切片脫蠟必須干凈，否則將會影響免疫組化染色的zui后結(jié)果。
蠟不溶于水，不與其它的臨床使用的抗體相融合。它只能靠特用的試劑，處理足夠的時間，才能將其除去。如果脫蠟不干凈，少許蠟存留于切片上，將會引起許多弊病，如染色不均勻，陽性物時隱時現(xiàn)，真假難辨，背景染色增加等。為了解決上述的問題，切片在染色前必須*脫蠟，目前用于脫蠟的試劑主要是二甲苯，因它脫蠟力強(qiáng)，脫蠟時間較短。較受使用者的青睞。脫蠟的時間要根據(jù)季節(jié)，室溫和試劑的新鮮謀面是在不同。如果在夏天，室溫較高，脫蠟試劑也新鮮，則脫蠟時間不需很多，3-5分鐘就已足夠。如果在冬天，室溫較低，脫蠟試劑也較陳舊，則脫蠟時間需要延長，10-20分鐘或更長。總之，操作時應(yīng)根據(jù)不同的季節(jié)，不同的室溫，不同的試劑來決定，脫蠟的時間，原則上是要*，干凈，*地脫去切片上的蠟。為了做到這一步，切片在脫蠟前的加溫將有助于完成上述的要求。比如：當(dāng)天切的切片，燒烤2小時后進(jìn)行染色，切片帶有溫度進(jìn)行脫蠟這將可加速脫蠟的過程，如果預(yù)先切好烤好的切片，在染色前，還必須對切片進(jìn)行加溫10-20分鐘，然后再行脫蠟，這樣脫蠟速度加快，效果魁偉更好。
七、必須*抑制內(nèi)源性過氧化物酶的活性，才能降低背景的染色。
在各種組織中都含有很多的內(nèi)源性過氧化物酶，尤其在紅細(xì)胞，中性粒細(xì)胞，單核細(xì)胞嗜酸性細(xì)胞，出血的組織壞死的組織等等。含有這種酶的各細(xì)胞和組織如果在染色前不對其進(jìn)行處理和抑制，它們將會在DAB底物的顯色時，與HRP一樣催化底樣，使之顯色，使之生成與陽性物一樣的黃棕色，造成混亂。為止，在免疫組化染色前，都必須對內(nèi)源性過氧化物酶進(jìn)行抑制。當(dāng)然，對它們進(jìn)行*的消除是不行的，因?yàn)橐种铺珔柡Γ瑢乖矔邢嗤囊种谱饔谩湓谝种苾?nèi)源性過氧化物酶時，也要注意對抗原的保護(hù)抑制也只能對它們中的大部分在DAB顯色后，顯示出淡黃*色，這就足以與真正陽性物的區(qū)別。抑制劑常用的是0.3%的H2O2，也可將其稱為1%H2O2，因?yàn)槭惺鄣腍2O2的濃度為30%，按其凈含量則為0.3%，如果按其溶液的用量則為1%。