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線粒體DNA提取試劑盒

 一，試劑盒組份

二，保存條件

本試劑盒整體保存于2-8度一年。使用前，在DNA酶I中加入600ul（50T）或者1100ul（100T）的DNA酶反應液，分裝后-20度保存。線粒體裂解液使用前常溫保存，如有沉淀可37度水浴溶解，不影響使用。

三，說明

線粒體DNA提取的關鍵是盡可能的去掉核DNA。本試劑盒利用差速離心到比較純凈的線粒體，再利用DNA酶消化裂解緩沖系統等多步驟去掉核DNA，zui后得到純凈的線粒體DNA。可用于PCR等對純度要求較高的實驗。

本試劑盒用于從動物細胞或組織中分離出完整而純化的線粒體。適合于動物軟組織（肝或腦組織）和硬組織（肌肉）以及培養細胞線粒體DNA的提取制備。不適合植物及其他標本的提取。

四，操作步驟

準備工作：在DNA酶I中加入600ul（50T）或者1100ul（100T）的DNA酶反應液，適當分裝后-20度保存。線粒體裂解液保存于常溫，如有沉淀37℃水浴溶解，離心機溫度下降到4℃（2-8℃），如無低溫離心機，也可以常溫離心，并將離心時間為10min的改為5min，但zui后所得DNA品質及產量可能會有一定影響。

1. 樣本處理

a. 組織勻漿：稱取100~200 mg新鮮組織如肝臟、腦、心肌等，PBS或生理鹽水沖洗，洗凈血水，濾紙吸干，用剪刀剪為碎塊放入小容量玻璃勻漿器內。加入1.0 mL冰預冷的Lysis Buffer，0℃冰浴上下研磨組織20次；

b. 培養細胞勻漿：消化細胞，PBS洗滌，800 × g 5~10 min離心收集細胞。計數。每次提取需要5 × 10⁷個細胞，加入1.0 mL冰預冷的Lysis Buffer重懸細胞，將細胞懸液轉移到小容量玻璃勻漿器內，0℃冰浴研磨30~40次；

2. 將組織或細胞勻漿物轉移到離心管，4℃，1000× g 離心5 min；

3. 取上清，加入一新的離心管中，4℃，1000× g 再次離心5 min。

4．取上清，加入一新的離心管中，4℃， 12,000 × g 離心10 min。離心后的上清含胞漿成分，可從中提取胞漿蛋白。將上清轉移到新離心管，線粒體沉淀在管底；

5. 在線粒體沉淀中加入0.5 mL  Wash Buffer重懸線粒體沉淀，4℃，1000× g 離心5 min；

6．取上清，加入一新的離心管中，4℃， 12,000 × g 離心10 min。棄上清，高純度的線粒體沉淀在管底；

7. 加入100ul DNA酶反應液重懸線粒體，吹打均勻后，再加入10ul DNA酶I溶液（見準備工作），混勻，37度水浴10min。此步為消化線粒體表面吸付的核DNA。4℃， 12,000 × g 離心5 min。盡可能的棄上清，再加入200ul TE 重懸線粒體沉淀，離心，洗去殘留的DNA酶。

8.得到的沉淀，用100ul TE 重懸線粒體沉淀。加入200ul線粒體裂解液，輕輕混勻（不可吹打），放置2min左右，不超過5min，再加入150ul蛋白沉淀液，迅速混勻。4℃， 12,000 × g 離心5 min。此步驟可進一步去除核DNA。

9．取上清，加入一新的離心管中（可選用等體積的酚氯fang異戊醇25:24:1抽提一次，再用氯fang抽提一次，或者直接用氯fang抽提兩次，一般來說，此步可省，并不影響后續的PCR），加入0.6倍體積的異丙醇（如無異丙醇，可加入2.5倍體積的乙醇沉淀DNA）及10ul核酸核酸助沉劑，混勻，-20℃沉淀半小時左右（此步可省），4℃， 12,000 × g 離心10 min。

10. 棄上清，再加入1ml  70%乙醇，4℃， 12,000 × g 離心10 min。重復用70%乙醇洗一次。

11. 棄上清后再次離心1min 吸棄上清，開蓋涼干約5-10分鐘。

12．加入20-30ul TE緩沖液,輕彈管底，37度水浴5分鐘，線粒體DNA溶解。

13. 進行DNA電泳檢測及-20度保存，進行下步的實驗。

四 注意事項：
1. 為保證獲得完整及盡可能多的線粒體，勻漿條件要示：*是全程低溫操作。第二是快速。第三，如用條件可將勻漿后的碎片在顯微鏡下觀察。與組織塊相比，培養細胞特別是貼壁培養細胞在用玻璃勻漿器勻漿時較難破壁，因而要選用小容量玻璃勻漿器、間隙嚴密的研杵上下研磨培養細胞。

2．線粒體DNA本身含量很低，如果電泳檢測不到，可加大上樣量，用更少量的TE溶解沉淀，或者直接進入PCR檢測。
2. 以離心力g計算正確的離心速度，不同的離心機可據此精確計算離心速度。
 

一般低溫度心機都有離心力顯示，如果沒有，可以用以下公式簡單的換算。

轉速與離心力換算

G＝1.11×(10^-5)×R×[rpm]^２
G為離心力，一般以ｇ（重力加速度）的倍數來表示；

 [rpm] ２即：轉速的平方； R為半徑，單位為厘米。