詳細(xì)介紹
公司產(chǎn)品僅供科研研究使用、不得用于臨床診斷!
貨號(hào) | 產(chǎn)品名稱 | 規(guī)格 |
A-Hc2061 | NHS活化磁珠 | 1ml(30mg/ml) |
NHS-Activated Magnetic Beads 是均勻的,表面覆蓋有高密度NHS(N-羥基琥珀 酰亞胺) 官能團(tuán)的磁珠。磁珠通過形成穩(wěn)定的酰胺鍵方式,快速、高效的共價(jià)結(jié)合任何含有伯胺的配 體(圖 1)。本款磁珠可以在偶聯(lián)條件下快速完成反應(yīng)(室溫 pH 6.5-9 下 15-30 分 鐘,4℃ 下 4 小時(shí)),且不需要危險(xiǎn)化學(xué)品。 NHS-activated Magnetic Beads 適于結(jié)合大分子蛋白。 Long-arm NHS-activated Magnetic Beads 被推薦用于結(jié)合小肽分子, 因?yàn)槠溟L臂(21-原子) 的親水連接基團(tuán)可以減少位阻現(xiàn)象。 NHS-activated Magnetic Beads 可以地作為親和樹脂進(jìn)行親和純化,將分子、 細(xì)胞和 部分細(xì)胞提取物進(jìn)行提煉純化。在與配體結(jié)合后,將磁珠添加到含有目標(biāo)分子的樣品中,然 后混合、孵育、洗滌和洗脫目標(biāo)分子(圖2)。
產(chǎn)品特點(diǎn)及優(yōu)勢:
·預(yù)活化即用型磁珠
·便于使用
·在pH7.4,4℃-25℃條件下可以快速偶聯(lián)
·穩(wěn)定的共價(jià)鍵,低水平的配體泄漏
·可重復(fù)使用的免疫親和基質(zhì)
·極低的非特異性結(jié)合率
·用途:用于純化抗體,蛋白質(zhì)/肽,DNA / RNA;細(xì)胞篩選、免疫沉淀
操作步驟
提示:
強(qiáng)烈建議在實(shí)驗(yàn)過程中進(jìn)行滴定優(yōu)化,以確定每個(gè)實(shí)驗(yàn)中應(yīng)用的磁珠數(shù)量。該協(xié)議可以相應(yīng)地放大和縮小。避免使用含有 tris 或其他含有伯胺類試劑的緩沖液,因?yàn)樗鼈兣c預(yù)期的偶聯(lián)反應(yīng)競爭。
1.將適量的珠子轉(zhuǎn)移到離心管中。將管放在磁力分離器上 1-3 分鐘。當(dāng)磁珠沉淀時(shí), 去除上清液。
2.取下試管,加入 5 倍磁珠溶液體積的 PBS 緩沖液,通過震蕩重新懸浮磁珠,渦旋 30 秒。將試管至于室溫環(huán)境 1-3 分鐘,再將管放在磁力分離器上 1-3 分鐘。當(dāng)磁珠沉淀 時(shí),去除上清液。
3.重復(fù)步驟 2 兩次。
4.向含有目標(biāo)蛋白質(zhì)的粗樣品中添加洗滌過的磁珠,并在室溫或所需溫度下溫浴 1-2 小時(shí) (溫度越低,培養(yǎng)時(shí)間越長)。提示:強(qiáng)烈建議進(jìn)行滴定實(shí)驗(yàn)以優(yōu)化培養(yǎng)時(shí)間。因?yàn)榉趸?的時(shí)間太長可能會(huì)導(dǎo)致很高的背景。
5.用 5 倍磁珠體積的 PBS 緩沖液或 1M NaCl 清洗磁珠,直到 280nm 處洗脫液的吸 光度接近背景水平(OD 280<0.05)。提示:添加更高濃度的鹽、非離子洗滌劑和還原劑也 可能會(huì)降低非特異性背景。例如,向洗滌緩沖液中添加 NaCl(濃度為 1-1.5 M)、0.1-0.5% 的非離子洗滌劑,如 TritonX-100 或 Tween-20,以及還原劑,如 DTT 或 TCEP(我們通 常使用 3mM)。 6.通過適當(dāng)?shù)姆椒ǎ绲?pH(2-4)、高 pH(10-12)、高鹽、高溫、親和洗脫或 SDS-PAGE 上樣緩沖液中煮沸,洗脫目標(biāo)蛋白。
PCR 反應(yīng)需要使用哪些試劑和設(shè)備?
試劑:
模板DNA:PCR反應(yīng)需要模板DNA,如從細(xì)胞、組織、血液中提取DNA等;引物:PCR反應(yīng)的兩個(gè)引物,分別與模板DNA的兩端配對擴(kuò)增所需的特定區(qū)域,引物也可以合成為TA克隆等過程中使用到的引物;dNTPs:PCR反應(yīng)中需要四種dNTPs,包括脫氧腺苷酸(dATP)、脫氧胸苷酸(dCTP)、脫氧鳥苷酸(dGTP)、脫氧胞嘧啶酸(dTTP),用于細(xì)胞分裂、DNA合成等生物學(xué)過程,用于PCR擴(kuò)增的模板DNA鏈的延伸和擴(kuò)增;Taq DNA聚合酶:PCR反應(yīng)需要的聚合酶,一般使用Taq聚合酶,還有一些其他種類的聚合酶如PFU、Phusion等,用于擴(kuò)增DNA鏈;PCR buffer溶液:對PCR反應(yīng)具有緩沖作用,調(diào)節(jié)反應(yīng)pH,硫代硫酸氫鹽SDS、小分子有機(jī)化合物如甲醛,可增強(qiáng)PCR反應(yīng)特異性,從而提高反應(yīng)效率;酶切體系:PCR擴(kuò)增往往涉及到重組、構(gòu)建和測序等等實(shí)驗(yàn)步驟,常常需要進(jìn)行酶切操作。MARK:一種分子量標(biāo)準(zhǔn),用來判別DNA片段大小的工具。DNA純化試劑盒:用于純化PCR反應(yīng)產(chǎn)物;
設(shè)備:
PCR儀:用于控制反應(yīng)溫度,保證PCR反應(yīng)時(shí)不同溫度環(huán)節(jié)的嚴(yán)格控制;電泳槽:用于分離PCR擴(kuò)增產(chǎn)物;核酸提取儀:從組織樣本中全自動(dòng)提取核酸。 這些試劑和設(shè)備在PCR分子生物學(xué)技術(shù)中均是,只有在有序齊全的基礎(chǔ)上,才能進(jìn)行PCR反應(yīng)并得出準(zhǔn)確結(jié)果。
PCR相關(guān)基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn):
PCR反應(yīng)基本步驟一般的聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)由20到35個(gè)循環(huán)組成,每個(gè)循環(huán)包括以下3個(gè)步驟:
一、變性:
利用高溫(93-98℃)使雙鏈DNA分離。高溫將連接兩條DNA鏈的氫鍵打斷。在第一個(gè)循環(huán)之前,通常加熱長一些時(shí)間以確保模板和引物分離,僅以單鏈形式存在。該步驟時(shí)間1-2分鐘,接下來PCR儀就控制溫度進(jìn)入循環(huán)階段。
二、退火或稱接合,復(fù)性:
在DNA雙鏈分離后,降低溫度使得引物可以結(jié)合于單鏈DNA上。此階段的溫度通常低于引物熔點(diǎn)5℃。錯(cuò)誤的退火溫度可能導(dǎo)致引物不與模板結(jié)合或者錯(cuò)誤地結(jié)合。該步驟時(shí)間1-2分鐘。
三、延伸:
DNA聚合酶由降溫時(shí)結(jié)合上的引物開始沿著DNA鏈合成互補(bǔ)鏈。此階段的溫度依賴于DNA聚合酶。該步驟時(shí)間依賴于聚合酶以及需要合成的DNA片段長度。傳統(tǒng)的Taq估計(jì)合成1000bp/min、較新的Tbr(來自于嗜熱菌Thermus brockianus)約40秒、商業(yè)公司生產(chǎn)的融合型聚合酶僅需約10-15秒。
PCR反應(yīng)條件優(yōu)化:
1、變性溫度和時(shí)間:
保證模板DNA解鏈?zhǔn)潜WC整個(gè)PCR擴(kuò)增成功的關(guān)鍵。加熱90~95°C, 30~60s,再復(fù)雜的DNA 分子也可變性為單鏈。溫度過高或高溫持續(xù)時(shí)間過長,可對Taq酶活性和dNTP分子造成損害。
2、復(fù)性溫度和時(shí)間:
PCR擴(kuò)增特異性取決于復(fù)性過程中引物與模板的結(jié)合。復(fù)性溫度越高,產(chǎn)物特異性越高。復(fù)性溫度越低,產(chǎn)物特異性越低。需根據(jù)引物的Tm值具體設(shè)定。
3、延伸溫度和時(shí)間:
一般位于Taq酶最適作用溫度70~75°C之間。引物小于16個(gè)核苷酸時(shí),過高的延伸溫度不利于引物與模板的結(jié)合,可以緩慢升溫到70~75°C。延伸反應(yīng)時(shí)間,可根據(jù)待擴(kuò)增片段的長度而定,小于1kb, 1min足夠;大于1kb需加長延伸時(shí)間。Taq酶可根據(jù)1kb/min增加時(shí)間。這里需要注意,延伸時(shí)間過長可能出現(xiàn)非特異擴(kuò)增。因此需要設(shè)置恰到好處的延伸時(shí)間。
4、循環(huán)數(shù):
其他參數(shù)選定后,PCR循環(huán)次數(shù)主要取決于模板DNA的濃度。理論上說20?25次循環(huán)后,PCR產(chǎn)物的積累即可達(dá)到最大值,實(shí)際操作中由于每步反應(yīng)的產(chǎn)率不可能達(dá)到100%,因此不管模板濃度是多少,20~30次是比較合理的循環(huán)次數(shù)。循環(huán)次數(shù)越多,非特異擴(kuò)增增加。
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