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BA1121-50
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上海市
更新時間:2021-11-23 16:03:46瀏覽次數(shù):174次
聯(lián)系我時,請告知來自 化工儀器網(wǎng)供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 50管/48樣 |
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貨號 | BA1121-50 | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 化工,生物產(chǎn)業(yè) |
谷氨酸合成酶(GOGAT)活性檢測試劑盒(紫外分光光度法)
注意:正式測定前務(wù)必取 2-3 個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定。
產(chǎn)品規(guī)格:50管/48樣
產(chǎn)品簡介:
GOGAT主要存在于原核生物、酵母菌及高等植物非綠色組織的前質(zhì)體中,和谷氨酰胺合成酶(GS)共同構(gòu)成GS/GOGAT循環(huán),參與氨同化的調(diào)控。
GOGAT以NADH為電子供體,催化谷氨酰胺的氨基轉(zhuǎn)移到α-酮戊二酸形成兩分子的谷氨酸,NADH在340nm 吸光度的下降速率可以反映GOGAT活性大小。
產(chǎn)品內(nèi)容:
提取液:液體60mL×1瓶,4℃保存;
試劑一:液體60mL×1瓶,4℃保存;
試劑二:粉劑×2支,4℃保存;
試劑三:粉劑×2支,4℃保存;
試劑四:粉劑×2支,-20℃保存。
工作液的配制:取試劑二、試劑三、試劑四各一支加入30mL試劑一中溶解。現(xiàn)用現(xiàn)配。可分裝后-20℃保存,避免反復(fù)凍融。
需自備的儀器和用品:
紫外分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1mL石英比色皿、研缽/勻漿器、冰和蒸餾水。
操作步驟:
一、粗酶液提取:
細菌或培養(yǎng)細胞:先收集細菌或細胞到離心管內(nèi),離心后棄上清;按照細菌或細胞數(shù)量(104個):提取液體積(mL)為500~1000:1的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率20%或200W,超聲3s,間隔10s,重復(fù)30次);10000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
組織:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進行冰浴勻漿。10000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
二、測定步驟:
1、 紫外分光光度計預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至340nm,光度計蒸餾水調(diào)零。
2、 工作液提前配置,平衡至室溫。
3、 樣本測定:
試劑名稱(μL) | 測定管 |
工作液 | 900 |
樣品 | 100 |
混勻,加樣品的同時開始計時,在340 nm波長下記錄20秒時的初始吸光度A1,比色后迅速將比色皿連同反應(yīng)液一起放入25℃水浴或培養(yǎng)箱中準(zhǔn)確反應(yīng)5分鐘;迅速取出比色皿并擦干,340nm下比色,記錄5分20秒時的吸光度A2,計算ΔA=A1-A2。 |
三、GOGAT活性計算:
(1)按樣本蛋白濃度計算:
單位的定義:每mg組織蛋白每分鐘消耗1nmol的NADH定義為一個酶活力單位。
GOGAT(U/mg prot)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(V樣×Cpr) ÷T=321.5×ΔA÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算:
單位的定義:每g組織每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。
GOGAT(U/g 鮮重)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(W ×V樣÷V樣總) ÷T=321.5×ΔA÷W
(3)按細菌或細胞密度計算:
單位的定義:每1萬個細菌或細胞每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位。
GOGAT(U/104 cell)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T=0.643×ΔA
V反總:反應(yīng)體系總體積,10-3L;ε:NADH摩爾消光系數(shù),6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光徑,1cm;V樣:加入樣本體積,0.1mL;V樣總:加入提取液體積,1 mL;T:反應(yīng)時間,5 min;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g;500:細菌或細胞總數(shù),500萬。
注意事項:
1、 測定期間樣本在冰上放置,以免變性和失活。
2、 最好兩個人同時做此實驗,一個人比色,一個人計時,以保證實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性。
3、 當(dāng)A1大于1.5或者ΔA大于0.6時,建議將樣品用蒸餾水稀釋后測定,當(dāng)ΔA過小時,可以延長酶促反應(yīng)時間(10min或15min)或者加大加入的樣品體積進行測量。
4、 由于提取液中含有一定濃度的蛋白(約1mg/mL),所以在測定樣品蛋白濃度時需要減去提取液本身的蛋白含量。
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