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柱式細(xì)胞基因組提取試劑盒
產(chǎn)品貨號(hào):28104
產(chǎn)品規(guī)格:50次/100次/200次
產(chǎn)品簡(jiǎn)介:
柱式細(xì)胞基因組提取試劑盒適合于從哺乳動(dòng)物細(xì)胞中提取高純度總DNA。本品可純化獲得分子量最大為50 kb的DNA片段,純化過程不需使用苯酚或氯仿等有毒溶劑,無需乙醇沉淀。本試劑盒采用優(yōu)化的緩沖體系使裂解液中的DNA高效特異的結(jié)合到硅基質(zhì)離心吸附柱上,PCR和其他酶促反應(yīng)的抑制劑可通過兩步洗滌步驟被有效去除,最后使用低鹽緩沖液或水洗脫,即可得到高純度DNA。純化得到的DNA可以直接用于酶切、PCR、Real-Time PCR、文庫構(gòu)建、Southern Blot、分子標(biāo)記等下游實(shí)驗(yàn)。
包裝清單:
產(chǎn)品名稱 | 50次包裝 | 100次包裝 | 200次包裝 | 儲(chǔ)存條件 |
BufferGL | 10ml | 20ml | 40ml | 室溫 |
Buffer PS | 10ml | 20ml | 40ml | 室溫 |
Buffer PW | 9ml | 18ml | 36ml | 室溫 |
Buffer EB | 5ml | 10ml | 20ml | 室溫 |
Spin Columns | 50個(gè) | 100個(gè) | 200個(gè) | 室溫 |
Collection Tubes | 50個(gè) | 100個(gè) | 200個(gè) | 室溫 |
自備試劑:使用前Buffer PW 50次加入36ml無水乙醇/100次加入72ml無水乙醇/200次加入144ml無水乙醇。
操作步驟:
材料處理:
1. 貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞應(yīng)先處理為細(xì)胞懸液(最大提取量為5×106個(gè)細(xì)胞),2000rpm(400×g)離心5分鐘,棄盡上清,加200 μl Buffer GL,振蕩至樣品*懸浮。
2. 如需去除RNA,可在上述步驟完成后,加入4μl的濃度為100 mg/ml的RNase A溶液,渦旋15秒。劇烈渦旋震蕩并用移液器吹打充分混勻,室溫放置5-10分鐘。
3. 柱平衡:向已裝入收集管(Collection Tubes)中的吸附柱(Spin Columns)中加入200μl Buffer PS,12000 rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
4. 將步驟3所得溶液短暫離心,全部加入到已裝入收集管的吸附柱(Spin Columns)中,若一次不能加完溶液,可分多次轉(zhuǎn)入。12000 rpm離心1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
5. 向吸附柱中加入450 μl Buffer PW(使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無水乙醇),12000 rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。 注意:如果純化的DNA用于鹽敏感的實(shí)驗(yàn)(例如平末端連接或直接測(cè)序),建議加入Buffer PW靜置2-5分鐘再離心。
6. 重復(fù)步驟5。
7. 12000 rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液。
注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶促反應(yīng)(酶切、PCR等)。8.將吸附柱放到一個(gè)新的1.5 ml離心管(自備)中,向吸附膜中間位置懸空滴加50μl Buffer EB,室溫放置2分鐘。12000 rpm離心1分鐘,收集DNA溶液。-20℃保存DNA。
注意:1)洗脫液的pH值對(duì)于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液,應(yīng)保證其pH值在7.0-8.5之間(可以用NaOH將水的pH值調(diào)到此范圍)。2)為了提高基因組提取量,可將離心得到的溶液重新加到吸附柱中,室溫放置2分鐘,12000 rpm離心1分鐘。3)洗脫體積不應(yīng)小于30μl,體積過少會(huì)影響回收效率。
注意事項(xiàng) :
1. 第一次使用前應(yīng)按照試劑瓶標(biāo)簽的說明在Buffer PW中加入無水乙醇。
2. 所有離心步驟均可室溫下進(jìn)行。
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