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通用基因組DNA提取試劑盒
  • 通用基因組DNA提取試劑盒
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更新時(shí)間:2024-08-29 15:32:30

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通用基因組DNA提取試劑盒為通用型,適合于從土壤,糞便,昆蟲(chóng),以及其他樣本中提取基因組DNA。對(duì)細(xì)菌,真菌,昆蟲(chóng)等樣本都具有很好的裂解效果,最大限度的保留了生物DNA的多態(tài)性。使用本試劑盒提取的DNA產(chǎn)量大、完整性好,可直接用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、 Southern雜交等實(shí)驗(yàn)。

通用基因組DNA提取試劑盒產(chǎn)品貨號(hào):26240產(chǎn)品規(guī)格:50T/100T產(chǎn)品簡(jiǎn)介:本試劑盒為通用型,適合于從土壤,糞便,昆蟲(chóng),以及其他樣本中提取基因組DNA。對(duì)細(xì)菌,真菌,昆蟲(chóng)等樣本都具有很好的裂解效果,最大限度的保留了生物DNA的多態(tài)性。使用本試劑盒提取的DNA產(chǎn)量大、完整性好,可直接用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、 Southern雜交等實(shí)驗(yàn)。產(chǎn)品組成:試劑名稱 50T 100TRNase A 1ml 1ml×2蛋白酶 K 1ml 1ml×2溶液 A 25ml 50ml溶液 B 25ml 50ml漂洗液 15ml 15ml×2洗脫液 15ml 30ml吸附柱 50 個(gè) 100 個(gè)收集管 50 個(gè) 100 個(gè)操作步驟:使用前請(qǐng)先在漂洗液中加入無(wú)水乙醇,加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)在室溫下離心。1. 樣品的處理:1)土壤:稱取 0.1-0.3g (根據(jù)干濕)土壤,放入研缽中,倒入適量的液氮,立即研磨,重復(fù) 3 次,使土壤顆粒研成粉末,加 500ul 溶液 A,振蕩至*懸浮。2)糞便:稱取 0.1-0.3g (根據(jù)干濕) 糞便,加 500ul 溶液 A,振蕩至*懸浮。3)昆蟲(chóng):稱取 0.1-0.3g 昆蟲(chóng),倒入適量的液氮,立即研磨,重復(fù) 3 次,使昆蟲(chóng)研成粉末,加 500ul 溶液 A,振蕩至*懸浮。4)未知樣品,如為細(xì)未狀,可直接稱取 0.1-0.3g(根據(jù)干濕)加 500ul 溶液 A,如為塊狀,可 0.1-0.3g 用液氮研磨成粉未,再加 500ul 溶液 A,振蕩至*懸浮。2. 向懸浮液中加入 20ul 的 RNase A(10mg/ml),55℃放置 10min。3. 加入 20ul 的蛋白酶 K(10mg/ml),充分混勻,55℃水浴消化,30min。消化期間可顛倒離心管混勻數(shù)次,12000轉(zhuǎn)離心 10min。將上清轉(zhuǎn)移到一個(gè)新的離心管中。如有沉淀,可再次離心。4. 加入 500ul 溶液 B,充分混勻。如出現(xiàn)白色沉淀,于 55℃放置 5min,沉淀即會(huì)消失,不影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。如溶液未變清亮,說(shuō)明樣品消化不*,可能導(dǎo)致提取 DNA 量少及不純,還有可能導(dǎo)致上柱后堵柱子,請(qǐng)?jiān)黾酉瘯r(shí)間。5. 加入 500ul 無(wú)水乙醇,充分混勻,此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀,不影響 DNA 的提取,可將溶液和絮狀沉淀都加入吸附柱中,放置 2min (分兩次加入,每次 700ul)。6. 12000rpm 離心 2min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。7. 向吸附柱中加入 600ul 漂洗液(使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇),12000rpm 離心 1min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。8. 向吸附柱中加入 600ul 漂洗液,12000rpm 離心 1min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。9. 12000rpm 離心 2min,將吸附柱置于室溫或 50℃溫箱放置數(shù)分鐘,目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除,否則漂洗液中的乙醇會(huì)影響后續(xù)的實(shí)驗(yàn)如酶切、PCR 等。10. 將吸附柱放入一個(gè)干凈的離心管中,向吸附膜中央懸空滴加 50-200ul 經(jīng) 65℃水浴預(yù)熱的洗脫液,室溫放置5min,12000rpm 離心 2min。11. 離心所得洗脫液再加入吸附柱中,室溫放置 2min,12000rpm 離心 2min,即可得到高質(zhì)量的基因組 DNA。注意事項(xiàng):1. 由于樣品不同,最終提取的 DNA 含量和純度也有所不同,一般來(lái)說(shuō),如果所提取 DNA 用電泳的方法檢測(cè)不到,PCR 會(huì)有結(jié)果,樣品盡可能的新鮮。否則會(huì)導(dǎo)致提取的 DNA 片段較小且提取量也下降。2. 若試劑盒中的溶液出現(xiàn)沉淀,可在 65℃水浴中重新溶解后再使用,不影響提取效果。3. 如果樣品消化不*,后面的離心步驟中可能會(huì)出現(xiàn)堵柱子的情況,可適當(dāng)延長(zhǎng)離心時(shí)間。4. 洗脫緩沖液的體積最好不少于 50ul,體積過(guò)小會(huì)影響回收效率;洗脫液的 pH 值對(duì)洗脫效率也有影響,若需要用水做洗脫液應(yīng)保證其 pH 值在 8.0 左右(可用 NaOH 將水的 pH 值調(diào)至此范圍),pH 值低于 7.0 會(huì)降低洗脫效率;DNA 產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃,以防 DNA 降解。5. DNA 濃度及純度檢測(cè)(濃度較高時(shí)):得到的基因組 DNA 片段的大小與樣品保存時(shí)間、操作過(guò)程中的剪切力等因素有關(guān)。回收得到的 DNA 片段可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計(jì)檢測(cè)濃度與純度。DNA 應(yīng)在OD260 處有顯著吸收峰, OD260 值為 1 相當(dāng)于大約 50μg/ml 雙鏈 DNA、40μg/ml 單鏈 DNA。OD260/OD280 比值應(yīng)為 1.7-1.9,如果洗脫時(shí)不使用洗脫緩沖液,而使用去離子水,比值會(huì)偏低,因?yàn)?pH 值和離子存在會(huì)影響光吸收值,但并不表示純度低。保存條件:室溫(15-25℃) 干燥保存,復(fù)檢期 12 個(gè)月,2-8℃保存時(shí)間更長(zhǎng)。開(kāi)封后請(qǐng)將 RNase A,蛋白酶 K 于-20℃保存。

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