材料與儀器
C57BL／6J小鼠
Hank’s液 單克隆抗體 補體 伊紅-Y染液
眼科剪 眼科鑷 平皿 不銹鋼網 試管 吸量管 尖吸管 載玻片 蓋玻片 顯微鏡
實驗步驟
一、實驗方法
1. 小鼠胸腺細胞懸液的制備：將4～6周齡小鼠采用頸椎脫臼法處死，取出胸腺放入已加入約4 ml冷Hank’s液的平皿中，在100目的不銹鋼網上研磨后，過篩，放入試管，離心1 000 rpm，5分鐘，用Hank’s液洗兩次。將沉淀的細胞重懸于Hank’s液中，配成1×107/ml細胞懸液。
2. 取試管3支，標明順序，依據下表依次加入1×107/ml胸腺細胞懸液、抗小鼠Thy-1的單克隆抗體(最適稀釋度)及Hank’s液，放入37℃水浴30分鐘。
3. 取出后每管加入1%伊紅-Y染液1滴，混勻，室溫放置2分鐘。
4. 重新混勻后分別在一張載玻片上滴片，加蓋玻片鏡檢。先在低倍鏡下觀察，再用高倍鏡觀察，比較3管中細胞死活情況。
二、實驗結果
死細胞呈紅色，無光澤且腫脹變大；活細胞不著色、有光澤且形態正常。
高倍鏡下計數200個細胞并計算其中死細胞的百分數。計算公式如下：死細胞百分數= EQ EQ \F(實驗管死細胞數%-對照管死細胞數%，100%-對照管死細胞數%)
