材料與儀器
組織
Hanks 培養液 胰蛋白酶
吸管 平皿 培養瓶 燒杯 攪拌器 三角燒瓶 不銹鋼篩 眼科剪 眼科鑷 計數板
實驗步驟
1. 準備
取各種已消毒的培養用品置于凈化臺面，紫外線消毒20 分鐘；
2. 布局
點燃酒精燈（或煤氣燈），安裝吸管帽（應通過火焰）；
3. 處理組織
把組織塊置入燒杯中，用Hanks液漂洗2~3 次，去除血污；如懷疑組織可能污染，可先置于含有青鏈霉素的混合液中30~60 分鐘；
4. 剪切
用眼科剪把組織塊切成2~3 毫米大小的塊（用手術刀割亦可），以便于消化；加入比組織塊總量多30~50 倍的胰蛋白酶液，然后一并倒入三角燒瓶中，結扎瓶口或塞以膠塞；
5. 消化
或用恒溫水浴，或置入37 ℃溫箱消化均可，消化中每隔20 分鐘應搖動一次，如用電磁恒溫攪拌器消化更好（消化前瓶中需置一無菌攪棒）；消化時間依組織塊的大小和組織的硬度而定；
6. 分離
在消化過程中見消化液發混濁時，可用吸管吸出少許消化液在鏡下觀察，如組織已分散成細胞團或單個細胞，立即終止消化，隨即通過適宜不銹鋼篩，濾掉尚未充分消化開的組織塊（必要時可繼續進行消化）；低速（500~1000 轉/分）離心消化液5 分鐘，吸出上清，加入適量含有血清的培養液（如有其它酶或EDTA 等消化，需用Hanks液洗脫一兩次后，再加入培養液）；
7. 計數
用計數板計數，如細胞懸液細胞密度過大，再補加培養液調整后，分裝入培養瓶中；對大多數細胞來說，pH 要求在7.2~7.4范圍，培養液呈微紅色，如顏色偏黃，說膽液體變酸，可用NaHCO3調整；
8. 培養
置入36.5 ℃溫箱培養；如用CO2溫箱培養，瓶口需用紗布棉塞或螺旋帽（松口）堵塞，紗布塞易生霉菌，每次換液時需更換新塞。
