材料與儀器
雄性 SD 大鼠
戊巴（匕匕）妥鈉 小牛血清 DMEM 酶消化液I、Ⅱ Nycodenz D-Hanks’液 HBSS 臺盼蘭
手術器械 尼龍網 相差顯微鏡 熒光顯微鏡
步驟
一、實驗步驟
1. 大鼠腹腔麻醉后在超凈臺上剖腹，進行門靜脈插管。
2. 以D-Hanks‘液灌注，同時剪開下腔靜脈，沖掉血液后，改灌以100 ml 酶消化液I(0.05% IV 型膠原酶)。
3. 待肝臟變軟后，離體肝臟并剪碎，繼續以酶消化液II(含20U/ml DNase I 的0.05% IV 型膠原酶)消化15 min，尼龍網過濾后以450 g 離心5 min(4℃，下同)。
4. 以HBSS 重懸沉淀至10 ml，再混以20 ml Nycodenz 液，分置于離心管中，并分別覆以2-3 ml HBSS，1450 g 離心16 min 后取界面細胞。
5. 以HBSS重懸后再次離心收集細胞，以DMEM重懸后進行細胞計數，并判斷存活率和產量，最后按照常規方法接種(105 細胞/cm2 )，次日換液，以后每2-3 天換液一次。
6. 傳代方法：棄去培液后以D-Hanks’液洗兩次，加0.125%胰酶(原代最好加0.05% EDTA)消化，鏡下觀察細胞突起回縮(2-5 min左右)，以*培液(DMEM+10% NBS)終止反應(若不用EDTA，可以不需離心)， 充分吹打后以 1:2-1:3 接種，然后繼續培養(5% CO2，37℃)。
二、結果
接種次日，光鏡下可見細胞呈星芒狀，胞質內有脂滴，熒光鏡下328 nm 處見自發熒光。附照片(圖 1)。
圖 1. 原代培養第 2 天的大鼠肝星狀細胞
