胚胎干細胞是具有一種具有自我更新和全能分化能力的細胞，能發育分化出成體所有的組織和器官，是體外研究發育調控機制理想的模型，也是用于人類疾病的干細胞治療和器官組織移植理-想的種子細胞。建立新的人類胚胎干細胞系仍然有很大的倫理學爭議，目前對人胚胎干細胞的研究主要就是基于已經建立的人胚胎干細胞系的研究。
人胚胎干細胞傳代培養的原理是人胚胎干細胞快速生長和擴增，而細胞培養箱恰恰能提供培養所需的環境。
人胚胎干細胞傳代培養的基本過程可分為如下幾步：
（一）試劑配制
（1）膠原酶溶液的配制使用濃度1 mg ／mL 。膠原酶，30mg；DF12培養基，30 mL 。使膠原酶充分溶解于DF12基礎培養基。用0.22 μm 濾器過濾除菌。
（2）胚胎干細胞培養基的配制DF12培養基，200 mL ；血清替代物50 mL ；200 mmol ／L -谷酰胺＋2-巰-基-乙-醇溶液，1.25 mL ；非必需氨基酸100x溶液，2.5 mL ；b-FGF 溶液，5 mL 。
所有組分都加入250ml培養瓶中，用0.22μm濾器過濾除菌。培養基最好在2周內使用。
（3）200 mmol ／L -谷酰胺＋2-巰-基-乙-醇溶液的配制200 mmol ／L -谷酰胺，5 mL ；2-巰-基-乙-醇，7 μl ，混勻。
（4）b-FGF的配制b-FGF，10 μg ；0.1％BSA無菌，5 mL 溶解后按0.5 mL 每份分裝冷凍保存。
（二）確定傳代時機
通常以下情況時，胚胎干細胞需要傳代
①小鼠胚胎成纖維細胞（mouse embryonic fibroblasts，MEF）飼養層超過2 周 。
②胚胎干細胞的克隆密度太高或克隆大小太大。
③胚胎干細胞克隆出現分化現象。
（三）膠原酶處理
（1）需要傳代時，將胚胎干細胞培養板從培養箱取出，吸去培養上清。
（2）6 孔板培養時，每個孔加1 mL 膠原酶溶液。
（3）處理至少5 min 。
（4）倒置顯微鏡下觀察，直至細胞克隆從培養板表面脫離。注意：可以看到克隆周邊會出現皺褶。根據消化情況，膠原酶處理時間可再延長6～10 min 。
（四）刮細胞
（1）用5 mL 玻璃移液管，將細胞從培養板表面刮下來。
（2）同時輕輕吹打膠原酶溶液，使細胞從培養板上面完-全脫離。
（3）所有細胞團都留在培養板中，直到整個6 孔 板都按步驟（1）、（2）處理完。
注意：這些步驟可以直視下完成，也可以在解剖纖維鏡下完成。
（五）收集并打散克隆
（1）將整塊6 孔 板的細胞都轉移到一個15 mL 離心管中。
（2）每個孔加1 mL 胚胎干細胞培養基沖洗，并將沖洗液也轉移到細胞懸液中。
（3）在15 mL 離心管中，輕輕吹打細胞懸液數分鐘，進一步打散細胞克隆。注意：吹打時避免產生氣泡。
（六）離心傳代
（1）將打散的細胞克隆，200 g 離心5 min 。
（2）去除上清液。
（3）輕輕拍散細胞團，加2～3 mL 胚胎干細胞培養基重懸細胞，輕輕混勻。
（4）200 g 離心5 min 。
（5）胚胎干細胞離心同時，將提前準備好的飼養層培養板取出，吸棄MEF培養基。
（6）用6 孔 板培養的飼養層，每個孔加1 mL PBS，輕輕晃動，洗去培養基中所含的血清。
注意：PBS處理成纖維細胞的時間不要超過6～10 min 。
（7）胚胎干細胞離心結束后，棄去上清液，輕輕拍散細胞團。
（8）加入2～3 mL 胚胎干細胞培養基，重懸細胞。
（9）再加入足夠的胚胎干細胞培養基，使6 孔 板的每個孔細胞懸液體積為2.5 mL 。
（10）去除飼養層培養板中的PBS，每個孔加入2.5 mL 細胞懸液，用移液管輕輕混勻。
（11）在水平臺面上，短促地上下左右地晃動培養板，使加入的胚胎干細胞均勻分布到飼養層上。
（12）將培養的胚胎干細胞放入培養箱，使克隆重新貼壁。注意：在重新貼壁的這段時間內，要盡量少開關培養箱，維持培養環境的穩定，以利于胚胎干細胞重新貼壁。
（13）每天更換新鮮培養基。注意觀察克隆生長狀態，在需要時按上述步驟再次傳代。
（七）凍存
（1）按上述步驟收集胚胎干細胞細胞懸液，200 g 離心5 min 。
（2）配好的凍存液（90％胎牛血清，10％DMSO）置于冰上備用。
（3）棄去上清液，將細胞團排松散后用凍存液重懸，逐滴加入凍存液，混勻。一般一個6 孔 培養板凍6 支 ，重懸時每個培養板的細胞加6 mL 凍存液。
（4）迅速將1 mL 細胞懸液裝入1.5 mL 凍存管。蓋緊后放入異丙醇凍存盒中。
（5）將凍存盒降至室溫后，轉入-80 ℃ 冰箱，保存過夜。
（6）次日將凍存的細胞轉入液氮罐保存。
注意：人胚胎干細胞凍存前不能將細胞消化成單細胞，消化后的細胞團塊稍大為好。
（八）復蘇
（1）將凍存的胚胎干細胞從液氮中取出，浸入37 ℃ 水浴，輕輕轉動，注意凍存管蓋不要沒入水中。
（2）當只剩一個小冰晶時，將凍存管從水浴中取出。
（3）將凍存管浸入95％乙醇浴消毒，在無菌超凈臺中晾干。
（4）將細胞從凍存管中轉入15 mL 離心管中，逐滴加入4 mL 胚胎干細胞培養基，輕輕混勻。
（5）200 g 離心5 min ，去除凍存液。
（6）去除上清液，將細胞團輕輕拍散，加2.5 mL 胚胎干細胞培養基重懸細胞。
（7）將細胞懸液轉移到鋪有照射后的飼養層細胞的6 孔 板中。每孔加2.5 mL 細胞懸液。飼養層細胞提前用1 mL PBS洗一遍，去除血清。
（8）放入培養箱，第二 天 將細胞上面漂浮的死細胞吸去并換液，按常規方法繼續培養。
（9）每天觀察細胞密度。按需傳代。
（1）所有試劑都應記錄保質期和批號，小包裝分裝保存，避免反復凍存。培養基配制后最好在2 周 內用完。
（2）胚胎干細胞克隆的消化液可有多種選擇，除了上文介紹的膠原酶消化，也可用0.05％的胰蛋白酶消化，消化時間比膠原酶消化所需時間要短，一般1～2 min ，待克隆周邊有皺褶時，要加用MEF培養基中止胰蛋白酶作用，其他步驟基本一致。
（3）用消化傳代的時候務必不能將人胚胎干細胞消化成單個細胞，否則克隆形成率很低。
（4）傳代時細胞密度很重要，人胚胎干細胞一般的傳代比例是1:5～1:10。接種的細胞太少不易生長，最好4～6 d 傳代一次。
（5）人胚胎干細胞對營養要求很高，因此必須每天換液，細胞一般培養在6 孔 皿中。
（6）一般使用第2～4 代 的小鼠成纖維細胞（MEF）作為飼養層細胞。細胞接種到培養皿后一般在3 d 內使用，放置時間過長的飼養層細胞不利于人胚胎干細胞生長。
（7）人胚胎干細胞的培養環境是37 ℃ ，飽和濕度，5％CO2。培養箱應當每月清洗和衡一次，最好不要在同一培養箱內再培養其他種類的細胞，以免交叉污染。
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