牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)
【產品名稱】
商品名稱:牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)
Name: Bovine Viral Diarrhea Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包裝規格】50T/盒
【預期用途】
本試劑盒適用于檢測的牛的組織樣品、鼻拭子等標本中牛病毒性腹瀉病毒核酸,適用于牛病毒性腹瀉病毒 感染的輔助診斷。
【檢驗原理】
本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,設計一對牛病毒性腹瀉病毒特異性引物,結合一條特異性探針,用熒光 PCR 技術對牛病毒性腹瀉病毒的核酸進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染病料的病原學診斷。
【試劑組成】
包裝規格 | 50T/盒 |
BVDV 反應液 | 500μL×2 管 |
酶液 | 50μL×1 管 |
BVDV 陽性質控品 | 50μL ×1 管 |
陰性質控品 | 250μL ×1 管 |
說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。
【適用儀器】
ABI7500、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。
【標本采集】
組織樣品:用無菌剪刀、鑷子采集待檢臟器或組織。可采集腸粘膜刮取物或肺、脾、淋巴結等作為待檢組織樣品;對流產胎牛、死胎,直接采集胎兒的組織;對懷疑死于粘膜病的牛,可采集xue塊或肺、脾、淋巴結等組織,尤其是腸道集合淋巴組織,如腸道樣品已發生自溶,可采扁桃體和淋巴結。將采集的樣品裝入無菌采樣袋或其他滅菌容器,編號備用;鼻拭子:對疑似為急性感染期或持續感染的牛,采集鼻分泌物拭子。取鼻拭子時將拭子深入鼻腔來回擦拭 2 次~3 次并旋轉,取分泌物;將采樣后的拭子放入盛有 2.0 mL PBS 的采樣管中,編號備用。
其它樣本采集請參考 GB/T 18637-2018 《牛病毒性腹瀉/粘膜病診斷技術規范》。
【保存和運輸】
采集或處理好的樣品在 2℃~8℃條件下保存應不超過 24 h;若需長期保存,應放置-70℃以下保存,凍融不超過 3 次。
【使用方法】
1. 樣品處理(樣本處理區)
1.1 樣本前處理
組織樣品:用無菌的剪刀和鑷子剪取待檢樣品 2.0g 于研缽或組織勻漿器中充分研磨,再加 10.0mLPBS 混勻,
2000r/min 離心 5 min 后,取 1.0ml 上清液轉入無菌 1.5mL 滅菌離心管中,編號備用。
鼻拭子:用含 1000U/mL 青霉素和鏈霉素的細胞培養液 4 倍稀釋后,2000r/min 離心 15min 取上清液,編號備用。
其他樣本前處理請參考 GB/T 18637-2018 《牛病毒性腹瀉/粘膜病診斷技術規范》。
1.2 核酸提取
推薦采用優利科(上海)生命科學有限公司生產的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進行核酸提取,請按 照試劑說明書進行操作。
2. 試劑配制(試劑準備區)
根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿
10 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:
試劑 | BVDV 反應液 | 酶液 |
用量(樣本數為 N) | 19μL | 1μL |
將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,20μL/管。
3. 加樣(樣本處理區)
將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 5μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻, 短暫離心。
4. PCR 擴增(核酸擴增區)
4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;
4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL;
熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列儀器請勿選擇
ROX 參比熒光,選擇 None 即可。
4.3 推薦循環參數設置:
步驟 | 循環數 | 溫度 | 時間 | 收集熒光信號 |
1 | 1 cycle | 50℃ | 10min | 否 |
2 | 1 cycle | 95℃ | 2min | 否 |
3 | 45 cycles | 95℃ | 15sec | 否 |
60℃ | 30sec | 是 |
5. 結果分析判定
5.1 結果分析條件設定(請參照各儀器使用說明書進行設置,以分析 ABI7500 儀器為例)
反應結束后自動保存結果,根據分析后圖像調節 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用戶可根據實際情況自行調整,Start 值可設在 3~15、End 值可設在 5~20,使閾值線位于擴增曲線指數期,陰性質控品的擴增曲線平直或低于閾值線),點擊 Analyze 自動獲得分析結果。
5.2 結果判斷
陽性:檢測通道 Ct 值≤40,且曲線有明顯的指數增長曲線; 陰性:樣本檢測結果 Ct 值>40 或無 Ct 值。
5.3 質控標準
陰性質控品:無特異性擴增曲線或無 Ct 值顯示;
陽性質控品:擴增曲線有明顯指數增長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。
6. 檢測方法的局限性
1. 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;
2. 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;
3. 陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;
4. 病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;
5. 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;
6. 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;
7. 本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
【注意事項】
1. 所有操作嚴格按照說明書進行;
2. 試劑盒內各種組分使用前應自然融化,wan全混勻并短暫離心;
3. 反應液應避光保存;
4. 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;
5. 使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;
6. 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;
7. 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;
8. 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。
【參考文獻】
[1] 中華人民共和國農業農村部(2018).GB/T 18637-2018.國家市場監督管理總局;中國國家標準化管理委員會.
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