【產品名稱】
商品名稱:禽腦脊髓炎病毒(AEV)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)
Name:Diagnostic Kit for Avian Encephalomyelitis Virus RNA (Real-Time PCR Method)
【包裝規格】50T/盒
【預期用途】
本試劑盒適用于檢測腦組織、胰腺、腺胃、全血等標本中禽腦脊髓炎病毒 RNA,適用于禽腦脊髓炎病毒感染的輔助診斷。其檢測結果僅供參考。
【檢驗原理】
本試劑盒用一對禽腦脊髓炎病毒特異性引物,結合一條特異性熒光探針,用一步法熒光 RT-PCR 技術對禽腦脊髓炎病毒 RNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染病料的病原學診斷。
【試劑組成】
包裝規格50T/盒
AEV 反應液500μL×2 管
酶液50μL×1 管
AEV 陽性質控品50μL ×1 管
陰性質控品250μL ×1 管
說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。
【適用儀器】
ABI7500、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。
【標本采集】
病死或撲殺禽的腦組織、胰腺、腺胃 2g;待檢活禽,用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管。
【保存和運輸】
上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸, 嚴禁反復凍融。
【使用方法】
1.樣品處理(樣本處理區)
1.1樣本前處理
每份組織分別從不同的位置稱取樣品約 1g,手術剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;全血樣品待血凝后取血清 100μL,置于 1.5mL 離心管中。
1.2核酸提取
推薦采用優利科(上海)生命科學有限公司生產的核酸提取試劑(離心柱法)進行核酸提取,請按照試劑說 明書進行操作。
2.試劑配制(試劑準備區)
根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;反應管數每滿 10 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:
試劑AEV 反應液酶液
用量19μL1μL
將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,20μL /管。
3.加樣(樣本處理區)
將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 5μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻, 短暫離心。
4.PCR 擴增(核酸擴增區)
4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;
4.2設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL;熒光通道選擇:
檢測通道(ReporterDye)FAM,淬滅通道(QuencherDye)NONE,光。ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光, 選擇 None 即可。
4.3推薦循環參數設置:
步驟循環數溫度時間收集熒光信號
11 cycle50℃10min否
21 cycle95℃2min否
345 cycles95℃15sec否
60℃30sec是
5.結果分析判定
5.1結果分析條件設定(請參照各儀器使用說明書進行設置,以分析 ABI7500 儀器為例)
反應結束后自動保存結果,根據分析后圖像調節 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用戶可根據實際情況自行調整,Start 值可設在 3~15、End 值可設在 5~20,使閾值線位于擴增曲線指數期,陰性質控品的擴增曲線平直或低于閾值線),點擊 Analyze 自動獲得分析結果。
5.2結果判斷
陽性:檢測通道 Ct 值≤40,且曲線有明顯的指數增長曲線; 陰性:樣本檢測結果 Ct 值>40 或無 Ct 值。
5.3質控標準
陰性質控品:無特異性擴增曲線或無 Ct 值顯示;
陽性質控品:擴增曲線有明顯指數增長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。
6.檢測方法的局限性
1.樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;
2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;
3.陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;
4.病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;
5.不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;
6.試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;
7.本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
【注意事項】
1.所有操作嚴格按照說明書進行;
2.試劑盒內各種組分使用前應自然融化,完-全混勻并短暫離心;
3.反應液應避光保存;
4.反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;
5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;
6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;
7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;
8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。
【參考文獻】
[1]孫石開,劉闖,魯俊鵬,等.禽肺病毒研究進展[J].中國預防獸醫學報,2012.
[2]謝志勤,謝芝勛,范晴,等.H9 亞型禽-流-感病毒和禽肺病毒二重 RT-PCR 檢測方法的建立[J].動物醫學進展,2016.
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