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炭疽桿菌 pagA、cap、rpoB 基因(BaP/C/R)檢測試劑盒(三重熒光 PCR 法)
  • 炭疽桿菌 pagA、cap、rpoB 基因(BaP/C/R)檢測試劑盒(三重熒光 PCR 法)
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貨物所在地:上海上海市

地: 國產

更新時間:2024-11-17 10:53:46

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炭疽桿菌 pagA、cap、rpoB 基因(BaP/C/R)檢測試劑盒(三重熒光 PCR 法)采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,對炭疽桿菌的 pagA、cap、rpoB 的基因分別設計特異性 引物和特異性探針,用熒光 PCR 技術對炭疽桿菌的 DNA 進行體外擴增檢測,用于對可疑感染者的病原學診斷。

【產品名稱】 

通用名稱:炭疽桿菌 pagAcaprpoB 基因(BaP/C/R)檢測試劑盒(三重熒光 PCR

NameBacillus Anthracis pagAcaprpoB gene Detection Kit (Real-Time PCR Method) 

【包裝規格】 50T/盒 

【預期用途】 炭疽是由炭疽桿菌(Bacillus Anthracis, BA)感染引起的一種人獸共患病。BA 在極-端環境中形成芽孢,可長期、穩定地存在于自然界中。由于 BA 的穩定性及其致病性,易引發突發公共衛生事件。目前的 BA 檢測方法主 要基于病原體的培養、染色鏡檢、血清學檢測等,但這些方法均不適合早期的快速偵檢。基于核酸檢測的熒光-PCR 技術,因其靈敏度高、操作簡單、特異性好,可快速檢測炭疽病原,及時控制炭疽疫情。 本試劑盒采用探針法實時熒光定量 PCR 技術,用于水皰內容物、病灶滲出物、分泌物、痰液、嘔吐物、 糞便、血液、腦脊液以及增菌液中炭疽桿菌的定性檢測。

【檢驗原理】 本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,對炭疽桿菌的 pagAcaprpoB 的基因分別設計特異性 引物和特異性探針,用熒光 PCR 技術對炭疽桿菌的 DNA 進行體外擴增檢測,用于對可疑感染者的病原學診斷。

【試劑組成】 包裝規格 50T/BaP/C/R 反應液 500μL×2 酶液 50μL×1 BaP/C/R 陽性質控品 50μL ×1 陰性質控品 250μL ×1 說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。 

【儲存條件及有效期】 -20±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。

【適用儀器】 ABI、安捷倫 MX3000P/3005PLightCyclerBio-RadEppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。 

【標本采集】 炭疽水皰內容物、炭疽病灶滲出物、分泌物、痰液、嘔吐物、糞便、血液、腦脊液等;

【保存和運輸】 上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸, 嚴禁反復凍融。 【使用方法】 

1. 樣品處理(樣本處理區)

1.1 樣本前處理 組織樣品:每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術-剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 200μL 1.5mL 滅菌離心管中;咽拭-子樣品直接取 200μL 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2 核酸提取 推薦采用優利科(上海)生命科學有限公司生產的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進行核酸提 取,請按照試劑說明書進行操作。

2. 試劑配制(試劑準備區) 根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性質控品+1 管陽性質控品),每 測試反應體系配制如下表: 試劑 BaP/C/R 反應液 酶液 用量(樣本數為 N20μL 1μL 將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,21μL/管。

3. 加樣(樣本處理區) 將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻, 短暫離心。 4. PCR 擴增(核酸擴增區)

4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;

4.2設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL熒光通道選擇:檢測通道(Reporter DyeFAMCy5TXR, 淬滅通道(Quencher DyeNONEABI 系列儀 器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

4.3推薦循環參數設置: 步驟 循環數 溫度 時間 收集熒光信號 1 1 cycle 9510min 2 40 cycles 9415sec 5530sec 是 

5. 結果分析判定

5.1 結果分析條件設定 設置 Baseline Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像 調節 Baseline start (一般可在 3~15 范圍內調節)stop (一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold Value (上下拖動閾值線至高于陰性質控品),重新分析結果。

5.2 結果判斷 FAM 通道為 pagA 基因檢測結果,Cy5 通道為 cap 基因檢測結果,TXR 通道為 rpoB 檢測結果; 陽性:檢測通道 Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數增長曲線; 可疑:檢測通道 35<Ct 值≤38,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38,且曲線有明顯的增長曲線, 判定為陽性,否則為陰性; 陰性:樣本檢測結果 Ct >38 或無 Ct 值。

6. 質控標準 陰性質控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示; 陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct 值≤32以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。 

7. 檢測方法的局限性

1.樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關; 

2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

3.陽性質控品、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

4.病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果; 

5.不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

6.試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;

7.本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。 

【注意事項】 

1.所有操作嚴格按照說明書進行;

2.試劑盒內各種組分使用前應自然融化,*混勻并短暫離心;

3.反應液應避光保存;

4.反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;

6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染; 

7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。

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