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1、肺纖維化模型
大鼠肺纖維化模型
SD大鼠，鼠齡6-8周齡，體重200g左右，氣管內給藥。稱重大鼠，麻醉后將大鼠仰臥固定于實驗臺，切開頸部的皮膚，鈍性分離頸部的肌肉，充分暴露氣管，行氣管切開術，模型組(BLM組)緩慢注人5 mg/kg BLM 0.1mL，立即旋轉動物，使藥液在肺內均勻分；對照組同上方法注入生理鹽水0.1 ml，分籠飼養，自由飲水。期間動物會出現背毛凌亂，體重減輕現象，會有少量死亡現象。
模型鑒定
造模14天后，可進行肺部CT觀測。
HE與MASSON肺組織病理檢測觀察
小鼠肺纖維化模型
成年雄性ICR小鼠，體重25-28g，氣管內給藥。稱重小鼠，麻醉后將小鼠仰臥固定于實驗臺，切開頸部的皮膚，鈍性分離頸部的肌肉，充分暴露氣管，行氣管切開術，模型組(BLM組)緩慢注人5 mg/kg BLM 50 μl，立即旋轉動物，使藥液在肺內均勻分；對照組同上方法注入生理鹽水50 μl，分籠飼養，自由飲水。期間動物會出現背毛凌亂，體重減輕現象，會有少量死亡現象。
2、潰瘍性結腸炎模型
小鼠潰瘍性結腸炎模型
6-8周雄性C57BL/6小鼠，予3%DSS常飲法造模，給DSS14天(小鼠每只/天飲水量大約是5ml),構建小鼠結腸炎模型。在 UC 造模期間，每天稱取小鼠體重，觀察小鼠糞便稠度及出血情況，進行 DAI評分,分別就體重降低、糞便稠度、出血三個參數計算 DAI，DAI=(體重評分+糞便稠度評分+出血評分)/3
(a)體重減少%=[-(實驗當天的體重-原始體重)/原始體重*100，0分≤1%，
1 分=1%-5%，2 分=5%-10%，3 分=10%-15%，4 分≥15%]；
(b)糞便稠度(0 分：糞便正常，2 分：糞便稀松，4 分：腹瀉)；
(c)出血(0 分：陰性未發現,出血情況，2 分：陽性發現出血情況，4
分：發現嚴重出血情況).
大鼠潰瘍性結腸炎模型
雄性Wistar 大鼠200-230g，予5%DSS常飲法造模，給DSS14天,構建小鼠結腸炎模型。在 UC 造模期間，每天稱取大鼠體重，觀察大鼠糞便稠度及出血情況，進行 DAI評分,進行 DAI評分,分別就體重降低、糞便稠度、出血三個參數計算 DAI，DAI=(體重評分+糞便稠度評分+出血評分)/3
(a)體重減少%=[-(實驗當天的體重-原始體重)/原始體重*100，0分≤1%，
1 分=1%-5%，2 分=5%-10%，3 分=10%-15%，4 分≥15%]；
(b)糞便稠度(0 分：糞便正常，2 分：糞便稀松，4 分：腹瀉)；
(c)出血(0 分：陰性未發現,出血情況，2 分：陽性發現出血情況，4
分：發現嚴重出血情況).
3、慢性心衰模型
大鼠慢性心衰模型
Wistar雄性大鼠200g-250g，適應性喂養1周后，阿霉素腹腔注射給藥2.5mg/kg/周，連續給藥6周，超聲心電圖記記錄以下血流動力學參數:心率(HR)、左室收縮壓(LVSP)、左室舒張末壓(LVEDP)、舒張壓(DAP)、收縮壓(SAP)、平均動脈壓(MAP)、左室壓力最大上升及下降速度(±dp/dtmax)進行測定。
小鼠慢性心衰模型
體重在25-30g之間的雄性C57BL/6J小鼠，適應性喂養1周。小鼠在建立模型前8小時禁止飲水及進食，每一只小鼠都要稱體重并記錄下體重值，模型組給予鹽酸阿霉素 (輝瑞制藥有 限公 司)腹腔注射 ，2mg/kg，前 5次每 3d注射1次， 以后每 7d注射 1次 ，累計用量 22mg/kg。給藥10周。采用超聲心動圖檢測小鼠心臟功能：心率(HR)、左室收縮壓(LVSP)、左室舒張末壓(LVEDP)、舒張壓(DAP)、收縮壓(SAP)、平均動脈壓(MAP)、左室壓力最大上升及下降速度(±dp/dtmax)。
4、癲癇模型
大鼠癲癇模型
9周齡健康雄性SD大鼠，海馬區腦立體定位注射20 mM海人酸1μl構建癲癇模型，注射海人酸后即可觀察大鼠行為，觀察時間是4h。海人酸注射大鼠發生的癇性發作按Racine分級標準進行判定：0級，無驚厥；I級，咀嚼、眨眼、立須等面部肌肉抽搐；II級，以點頭運動為主的頸部肌肉抽搐；III級，單側前肢陣攣、抽搐；IV級，雙側前肢陣攣、抽搐伴身體立起；V級，雙側后肢強直，身體背曲強直，跌倒伴全身陣攣。0級為正常，I-III級為癲癇部分性發作，IV~V級為癲癇大發作；凡在觀察時間內連續出現3次IV~V級發作者即為成功癲癇模型。
小鼠癲癇模型
8-10周健康雄性C57BL/6小鼠，將小鼠置于立體定位儀上，根據預實驗摸索并優化麻醉劑用量、海人酸注射量和注射部位的各參數，得到以大腦Bregma為原點的海馬定位注射坐標：-2.0、-1.8、-2.3 mm(右側海馬)，進行單側注射海人酸12 mg/kg后，觀察其行為表現。以在急性期出現持續l h以上的III 級以上發作，即為成功癲癇模型。
5、帕金森模型
大鼠帕金森模型
選取雄性 SD 大鼠 ，體質量 250 ～300 g，進行腦立體定位手術，麻醉后，將大鼠頭部固定于腦立體定位儀，顱骨暴露出 2 點，腦黑質坐標：(1)anterior-posterior(AP): 5.2 mm; medial-lateral (ML): 1.9 mm; deep ventral(DV): 8.2 mm, (2) AP: 5.5 mm; ML: 2.4 mm; DV: 7.6 mm，并注入藥物，正常對照組每側注入含0.2%抗壞血酸 0.9%氯化鈉注射液 3 μl，6-OHDA 處理實驗組每側注入濃度為 2.5mg/ml 的6-OHDA 溶液3 μl(溶劑為含0.2%抗壞血酸 0.9%氯化鈉注射液)。
鑒定：(1)大鼠經 6-OHDA 損毀兩周后，在黑暗安靜的環境下腹腔注射 APO 溶液(1mg·kg-1)，單獨置于籠內，觀察其行為變化，5min 后開始計算旋轉圈數，以向
健(左)側、首尾相接、環曲 360°者計一圈，記錄 5min，若旋轉>7r·min-1 或>35r·5min-1(*毀損)視為建模成功；旋轉<7r·min-1 或<35r·5min-1(部分毀 損)及 15min 無旋轉或向右側旋轉者均視為建模失敗;(2)HE染色觀察腦組織病理學變化
小鼠帕金森模型
C57BL / 6 雄性小鼠,8 周齡,體質量 20 ~ 22 g，小 將動物固定在立體定位儀(上,沿顱 頂矢狀縫切開皮膚,暴露前囟( Bregma)。 在前囟前 (AP)+0. 5 mm,中線旁(ML) -2. 0 mm(右側) 打孔。 微量進樣器緩慢下行,先后分別在 顱骨下(DV)-3. 0 mm 和-2. 0 mm 各注入 6-OHDA 溶 液 0. 78 μL,速度 0. 5 μL·min-1 ,每次注射完成后需 留針 3 min。 勻速退出進樣器,縫合處理創面。
鑒定：術后的 5 周中,每周腹腔注射 0. 125 g·L-1 的 APO(0. 5 μg·g-1 )觀察動物旋轉情況。 將動物放置在 500 mL 的燒杯里,杯底附新鮮干燥墊料,計數 30 min 內,小鼠向未損傷側的旋轉圈數,每旋轉 360 度記為 1 圈。 統計結果以旋轉次數(rotation·30 min-1 )表示。
6、糖尿病模型
大鼠二型糖尿病模型
8周齡雄性SD大鼠(200g左右)，用高脂高糖飼料喂養4周后禁食12小時，腹腔注射配制好的鏈脲佐菌素溶液30 mg/kg，連續注射3天。4天后檢測空腹血糖值，當空腹血糖≥ 11.1mmol/L時，并且高血糖持續兩周且無恢復現象者可作為成功模型。
小鼠二型糖尿病模型
C57BL/6 雄性小鼠(20g左右)，用高脂高糖飼料喂養4周后禁食12小時，腹腔注射配制好的鏈脲佐菌素溶液30 mg/kg，連續注射3天。4天后檢測空腹血糖值，當空腹血糖≥ 11.1mmol/L時，并且高血糖持續兩周且無恢復現象者可作為成功模型。
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