蔗糖磷酸化酶(Sucrose Phosphorylase, SP)試劑盒說明書
蔗糖磷酸化酶(Sucrose Phosphorylase, SP)試劑盒說明書
分光光度法 50 管/48 樣
正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義:
SP(EC2.4.1.7)主要存在于微生物和植物中,裂解葡萄糖苷鍵,催化葡萄糖基轉移到果糖、木糖、半乳糖和鼠李糖等,合成相應的葡萄糖基低聚糖。此外,SP 還能催化氫醌合成熊果苷,具有ji強的美白效果,在化妝品工業中具有重要應用。
測定原理:
SP 能夠以磷酸為受體,催化蔗糖產生 1-磷酸葡萄糖,在葡萄糖磷酸變位酶催化下變位為 6-磷酸葡萄糖,在 6-磷酸葡萄糖脫氫酶作用下還原NADP+生成NADPH,導致 340nm 光吸收值增加。測定 340nm 吸光度增加速率,即可計算SP 活性。
組成:
產品名稱 | BF6017-50T/48S | Storage |
提取液:液體 | 50ml | 4℃ |
試劑一:液體 | 35ml | 4℃ |
試劑二:粉劑 | 1 瓶 | -20℃避光 |
試劑三:粉劑 | 1 瓶 | -20℃避光 |
說明書 | 一份 |
試劑二:粉劑×1 瓶,-20℃避光保存,臨用前加 6ml 蒸餾水溶解;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融。
試劑三:粉劑×1 瓶,-20℃避光保存,臨用前加 12ml 蒸餾水水溶解;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融。
自備儀器和用品:
天平、低溫離心機、恒溫水浴鍋、紫外分光光度計、1 ml 石英比色皿和蒸餾水。
粗酶液提取:
1. 組織:按照組織質量(g):提取液體積(ml)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g 組織,加入 1ml 提取液)進行冰浴勻漿,然后 10000g,4℃,離心 10min,取上清待測。
2. 細菌、真菌:按照細胞數量(104 個):提取液體積(ml)為 500~1000:1 的比例(建議 500 萬細胞加入 1ml 提取液),冰浴超聲波破碎細胞(功率 300w,超聲 3 秒,間隔 7 秒,總時間 3min);然后 10000g, 4℃,離心 10min,取上清置于冰上待測。
測定步驟:
1. 分光光度計預熱 30min,調節波長至 340nm,蒸餾水調零。
2. 操作表
試劑名稱 | 對照管 | 測定管 |
試劑一(μl) | 600 | 600 |
試劑二(μl) | 100 | 100 |
試劑三(μl) | 200 | 200 |
樣本(μl) | 100 | |
蒸餾水(μl) | 100 | |
迅速混勻,于 1ml 石英比色皿,37℃下測定 340nm 的初始吸光值與反應 2min 后的吸光 值,測定管記作A1 與A2,對照管記作A3 與A4,△A=(A2- A1)-(A4- A3)。 |
SP 活性計算公式:
1. 按照蛋白濃度計算
酶活定義:37℃,pH6.8 時,每毫克蛋白質每分鐘催化產生 1nmol NADPH 為一個酶活單位。
SP 活性(nmol/min/mg prot)=
2. 按照樣本質量計算
DA
e′ d
×V 反總÷V 樣÷Cpr÷T=804×△A÷Cpr
酶活定義:37℃,pH6.8 時,每克樣本每分鐘催化產生 1nmol NADPH 為一個酶活單位。
SP 活性(nmol/min/g 鮮重)=
3. 按照細胞數量計算
DA
e′ d
×V 反總÷(V 樣÷V 樣總×W)÷T=804×△A÷W
酶活定義:37℃,pH6.8 時,每 104 個細胞每分鐘催化產生 1nmol NADPH 為一個酶活單位。
SP 活性(nmol/min/104 cell)=
個)
DA
e′ d
×V 反總÷(V 樣÷V 樣總×細胞數量(萬個))÷T=804×△A÷細胞數量(萬
e:NADPH 摩爾消光系數,6220 L/mol/cm;d:比色皿光徑,1cm;V 反總:反應體系總體積,1ml;V 樣:反應體系中樣本體積,0.1ml;W:樣本質量,g;Cpr:蛋白濃度,mg/ml;V 樣總:加入提取液體積, 1ml;T:反應時間,2min
注意事項:
1. 可選用BCA 法測定蛋白含量試劑盒測定蛋白含量。
2. 樣本較多時,可以按照每個樣本試劑一:試劑二:試劑三=600:100:200(μl)的比例配制工作液,用多少配多少,臨用前立刻配制,10 分鐘內使用。
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