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| 供貨周期 | 現貨 | 規格 | 50T |
|---|---|---|---|
| 貨號 | YLK10013P | 應用領域 | 化工,生物產業 |
| 主要用途 | 科研實驗 | 英文名稱 | Avian?adenovirus?C?type?4?Detection?Kit |
| 保存條件 | -20℃±5℃，避光保存 | 有效期 | 12個月 |
| FADV-C-4?反應液 | 500μL×2?管 | FADV-C-4?陽性質控品 | 50μL?×1?管 |
禽腺病毒C種4型(FADV-C-4)熒光PCR試劑盒
【產品名稱】
商品名稱：禽腺病毒C種4型(FADV-C-4)熒光PCR試劑盒
Name ：Avian adenovirus C type 4 Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包裝規格】25T/盒、50T/盒
【預期用途】
禽腺病毒 C 種 4 型(Avian adenovirus C type 4 , FADV-C-4)屬于腺病毒科禽腺病毒屬，為雙鏈 DNA 病毒，分為 3 個群。自 2013 年，國內雞群由禽腺病毒（FADV）引起的包涵體肝炎、心包積液病例逐漸增多[1]。而到 2015 年，高致病性血清４型 FADV 引起的肝炎－心包積綜合癥已在國內雞群爆發，對養禽業的發展構成嚴重威脅[2-3]。
本試劑盒適用于檢測的禽類動物肺、脾、腦等組織、呼吸道分泌物、全血等標本中禽腺病毒 C 種 4 型 DNA， 適用于禽腺病毒 C 種 4 型感染的輔助診斷。
【檢驗原理】
本試劑盒用一對禽腺病毒 C 種 4 型特異性引物，結合一條特異性熒光探針，用一步法熒光PCR 技術對禽腺病毒 C 種 4 型病毒 DNA 進行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。
【試劑組成】
包裝規格 | 25T/盒 | 50T/盒 |
FADV-C-4 反應液 | 500μL×1 管 | 500μL×2 管 |
酶液 | 25μL×1 管 | 50μL×1 管 |
FADV-C-4 陽性質控品 | 50μL ×1 管 | 50μL ×1 管 |
陰性質控品 | 250μL ×1 管 | 250μL ×1 管 |
注：
1） 不同批號試劑不能混用。
2） 試劑盒內各試劑組份足夠包裝規格所標示的檢測次數。
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次，有效期 12 個月。
【適用儀器】
ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。
【標本采集】
病死或撲殺禽，取肺、脾、腦等組織；待檢活禽，用棉拭子取呼吸道分泌物，放于 1mL50%甘油生理鹽水中；用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管。
【保存和運輸】
上述標本短期內可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸， 嚴禁反復凍融。
【使用方法】
1. 樣品處理（樣本處理區）
1.1 樣本前處理
每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術/剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨，待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；棉拭子直接取 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；全血樣品待血凝后取血清 100μL，置于 1.5mL 離心管中。
1.2 核酸提取
推薦采用公司生產的核酸提取/或純化試劑（磁珠法或離心柱法）進行核酸提取，請按 照試劑說明書進行操作。
2. 試劑配制（試劑準備區）
根據待檢測樣本總數，設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照；反應管數每滿 10 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：
試劑 | NDV 反應液 | 酶液 |
用量 | 20μL | 1μL |
將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中，21uL/管。
3. 加樣（樣本處理區）
將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻，
短暫離心。
4. PCR 擴增（核酸擴增區）
4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內；
4.2 設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25μL；熒光通道選擇： 檢測通道（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye）NONE，ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光，選擇 None 即可。
4.3 推薦循環參數設置：
步驟 | 循環數 | 溫度 | 時間 | 收集熒光信號 |
1 | 1 cycle | 95℃ | 10min | 否 |
2 | 40 cycles | 94℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
5. 結果分析判定
5.1 結果分析條件設定
設置Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲線出現整體傾斜時，根據分析后圖像調節 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節)，以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結果。
5.2 結果判斷
陽性：檢測通道 Ct 值≤35，且曲線有明顯的指數增長曲線；
可疑：檢測通道 35<Ct 值≤38，建議重復檢測，如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38，且曲線有明顯的增長曲線， 判定為陽性，否則為陰性；
陰性：樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。
6. 質控標準
陰性質控品：Ct>38 或無 Ct 值顯示；
陽性質控品：擴增曲線有明顯指數生長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。
7. 檢測方法的局限性
1. 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；
2. 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現假陽性結果；
3. 陽性對照、擴增產物泄漏，會導致假陽性結果；
4. 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；
5. 不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；
6. 試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現假陰性或定量檢測不準確的結果；
7. 本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
【注意事項】
1. 所有操作嚴格按照說明書進行；
2. 試劑盒內各種組分使用前應自然融化，wan全混勻并短暫離心；
3. 反應液應避光保存；
4. 反應中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；
5. 使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服；
6. 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行，以免交叉污染；
7. 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；
8. 試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。
【參考文獻】
[1] 趙繼勛.Ⅰ群禽腺病毒感染的流行病學探究與防控認識[J]. 北方牧業, 2017(6): 18.
[2] 楚電峰, 劉相娥, 薄智勇, 等.Ⅰ群禽腺病毒的流行病學和防控研究現狀[J]. 中國動物檢疫, 2017,34(5): 86-89.
[3] 王亞楠, 韓濤, 李純玲, 等. 禽腺病毒Ⅰ群的研究現狀[J]. 中國動物保健, 2017, 19(1): 61-64.
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