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禽呼腸孤病毒(ARV)核酸檢測試劑盒(PCR法)

商品名稱：禽呼腸孤病毒(ARV)核酸檢測試劑盒(PCR法)

Name       ：Diagnostic Kit for Avian Reovirus Virus RNA (Real-Time PCR Method)

【包裝規格】25T/盒、50T/盒

【預期用途】

本試劑盒適用于檢測全血、血漿或血清、滑膜、腱、關節和心臟等標本中禽呼腸孤病毒（Avian reovirus， ARV）、番鴨呼腸孤病毒（Muscovy duck reovirus，MDRV）、新型鴨呼腸孤病毒（Novel duck reovirus，NDRV）中的 RNA，適用于幾種病毒感染的輔助診斷。其檢測結果僅供參考。

【檢驗原理】

本試劑盒用一對禽呼腸孤病毒特異性引物，結合一條特異性熒光探針，用一步法熒光 RT-PCR 技術對禽呼腸孤病毒 RNA 進行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑感染病料的病原學診斷。

【試劑組成】

說明：不同批號的試劑盒組分不可交互使用

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融不超過 5 次，有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI7500、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

病死或撲殺禽，取滑膜、腱、關節或心臟組織；待檢活禽，用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管。

【保存和運輸】

采集或處理好的樣品在 2℃~8℃條件下保存應不超過 24 h；若需長期保存，應放置-70℃以下保存，凍融不超過 3 次。

【使用方法】

1.  樣品處理（樣本處理區）

1.1  樣本前處理

每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術/剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨，待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；全血樣品待血凝后取血清 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2  核酸提取

推薦采用公司生產的核酸提取/或純化試劑（磁珠法或離心柱法）進行核酸提取，   請按照試劑說明書進行操作。

2.  試劑配制（試劑準備區）

根據待檢測樣本總數，設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照；反應管數每滿 10 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：

將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中，20μL/管。

3.  加樣（樣本處理區）

將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 5μL，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻， 短暫離心。

4.  PCR 擴增（核酸擴增區）

4.1  將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內；

4.2  設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25μL；

熒光通道選擇：檢測通道（ReporterDye）FAM，淬滅通道（QuencherDye）NONE，ABI 系列儀器請勿選擇 ROX

參比熒光，選擇 None 即可。

4.3  推薦循環參數設置：

5.   結果分析判定

5.1   結果分析條件設定（請參照各儀器使用說明書進行設置，以分析 ABI7500 儀器為例）

反應結束后自動保存結果，根據分析后圖像調節 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值（用戶可根據實際情況自行調整，Start 值可設在 3～15、End 值可設在 5～20，使閾值線位于擴增曲線指數期，陰性質控品的擴增曲線平直或低于閾值線），點擊 Analyze 自動獲得分析結果。

5.2   結果判斷

陽性：檢測通道 Ct 值≤40，且曲線有明顯的指數增長曲線； 陰性：樣本檢測結果 Ct 值>40 或無 Ct 值。

5.3   質控標準

陰性質控品：無特異性擴增曲線或無 Ct 值顯示；

陽性質控品：擴增曲線有明顯指數增長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。

6.   檢測方法的局限性

1. 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；

2. 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現假陽性結果；

3. 陽性對照、擴增產物泄漏，會導致假陽性結果；

4. 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；

5. 不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；

6. 試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現假陰性或定量檢測不準確的結果；

7. 本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項】

1. 所有操作嚴格按照說明書進行；

2. 試劑盒內各種組分使用前應自然融化，混勻并短暫離心；

3. 反應液應避光保存；

4. 反應中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

5. 使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服；

6. 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行，以免交叉污染；

7. 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

8. 試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。