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軟瓊脂(softagar)實驗一般用來檢測細胞的集落形成能力?，F在這種方法越來越多的用于分離癌細胞，也可以用來確認癌細胞是否具有癌化特性，為進一步做腫瘤小鼠移植模型奠定理論基礎。該方法看似簡單，但如果細節掌握不好，往往導致實驗失敗或數據缺乏說服力。如果你曾經在這個實驗上栽了跟頭，請不妨在如下幾個方面進行嘗試：1.要確保在整個實驗過程中所使用的瓊脂處于*液體狀態（80℃），尤其是在做基底時，如果瓊脂凝固過快會導致基底不均一；2.做瓊脂基底是應避免產生小氣泡，一旦有小氣泡產生，應該立即將氣泡趕走；3
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剛復蘇的細胞狀態不好，有許多死細胞，頻繁換液好嗎？大致如題，有一些人認為細胞剛復蘇不能狗頻繁的換液，說是細胞會自己分泌細胞因子維持自己的生存，換液的話，就會影響細胞的生長，長的不好，但是我的細胞狀態不好而且有很多細胞碎片，細胞死亡之后在培養基中會不會釋放很多的有毒物質，對細胞的生長不利，所以就想要換液把死細胞和細胞碎片都洗掉，目前不知道怎么選擇，所以想請大家給一下就參考意見？能洗掉的就洗，洗不掉的也不用刻意的用力吹，正如你所說的細胞密度小，可能會損害細胞。換液的話還是2~3天換，不要每天都換液。
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基礎篇-無菌操作基本技術1.實驗進行前，無菌室及無菌操作臺(laminarflow)以紫外燈照射30-60分鐘滅菌，以70%ethanol擦拭無菌操作抬面，并開啟無菌操作臺風扇運轉10分鐘后，才開始實驗操作。每次操作只處理一株細胞株，且即使培養基相同亦不共享培養基，以避免失誤混淆或細胞間污染。實驗完畢后，將實驗物品帶出工作臺，以70%ethanol擦拭無菌操作抬面。操作間隔應讓無菌操作臺運轉10分鐘以上后，再進行下一個細胞株之操作。2.無菌操作工作區域應保持清潔及寬敞，必要物品，例如試管架、吸管
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近看到不少問有關細胞培養污染的事，正好我看到了一個有關這方面的總結，很全很好很強大，跟大家分享下細胞培養中常見的污染情況總結如下:常見的污染如下：1、細菌：細菌在普通倒置顯微鏡下為黑色細沙狀，根據感染細菌的不同，可有不同的外形，培養液一般會渾濁變黃，對細胞生長影響明顯。仔細檢查一下器皿的滅菌情況，是否在高壓滅菌時放氣時間足夠，壓力足夠！尤其是和儲存培養液接觸的移液管等物品，連續兩次污染的話有可能造成儲存液污染，一定要注意！下次使用前檢查一下培養液是否存在渾濁的現象！可在培養液中加相應的抗生素處理
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1、熒光免疫測定技術的概念：將試劑抗原或試劑抗體用熒光素進行標記，試劑與標本中相應的抗體或抗原反應后，測定復合物中的熒光素，這種免疫技術，稱為免疫熒光素技術。2、熒光的產生：物質吸收外界能量而進入激發狀態，在回復基態時多余的能量以電磁輻射的形式釋放，即發光，這種光稱為熒光。這種物質，稱為熒光素。由光激發所引起的熒光，為光致熒光------熒光免疫技術由化學反應所引起的熒光，為化學熒光------化學發光技術3、熒光素的熒光特性：⑴停止供能，熒光現象隨即終止⑵對光的吸收和熒光的發射具高度選擇性,綠
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一般我們購買商品化的primaryantibody的時候，抗體的說明書中都會給我們一個推薦的抗體使用濃度。這個濃度在一定程度上來說，是過飽和的，可以滿足大多數實驗的染色需求。但是因為是過飽和的濃度，這就帶來了一定程度的抗體浪費。而過量的抗體，也會大大提高樣本的自發熒光。從另一個角度來看，因為廠家給出的推薦濃度都是基于一個特定的樣本濃度和樣本體積，所以在一些特殊的實驗中，比如樣本濃度或樣本體積過大的實驗，推薦的濃度就無法達到飽和滴加的要求。在這樣的前提下，推薦實驗用戶針對自己的實驗要求，zui好可
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1.實驗進行前，無菌室及無菌操作臺(laminarflow)以紫外燈照射30-60分鐘滅菌，以70%ethanol擦拭無菌操作抬面，并開啟無菌操作臺風扇運轉10分鐘后，才開始實驗操作。每次操作只處理一株細胞株，且即使培養基相同亦不共享培養基，以避免失誤混淆或細胞間污染。實驗完畢后，將實驗物品帶出工作臺，以70%ethanol擦拭無菌操作抬面。操作間隔應讓無菌操作臺運轉10分鐘以上后，再進行下一個細胞株之操作。2.無菌操作工作區域應保持清潔及寬敞，必要物品，例如試管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暫時
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MEM細胞培養基細胞培養是實驗室里常見和基本的實驗了，但卻不是簡單的。別小看細胞培養，這里可蘊含著大學問。有時候細胞狀態不好，轉染、藥篩這些實驗根本就沒辦法做。影響細胞培養的因素很多，讓我們先從培養基和血清說起。經典的培養基有很多種，Invitrogen(GIBCO)、ThermoFisher(HyClone)、Sigma等公司都可以提供。其中DMEM、RPMI1640、MEM、DMEM/F12都是應用廣泛的培養基。其他如M199、IMDM、L15培養基等也用于某些細胞的培養?！鬗EM是由Eag
