谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)檢測試劑盒(比色法)
產品貨號:BA1824
產品規格:50T/100T
產品簡介:
谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione Peroxidase,GSH-Px)是一種含硒的水溶性四聚體蛋白酶。幾平在所有組織中都有分布,在一些病理狀況下谷胱甘肽過氧化物酶的活力會發生明顯的變化,該酶可以清除活細胞內過氧化物,在保護細胞免受自由基損傷過程中起著關鍵作用。細胞內的脂類容易和自由基發生反應,產生脂類過氧化物。谷胱甘肽過氧化物酶不僅具有消除自由基和衍生物的作用,還與過氧化氫酶(CAT)、磷脂氫過氧化物谷胱甘肽過氧化物酶(PH-GSH-Px)、谷胱甘肽S轉移酶(GST)構成不同基質特異性的多水平的還原有機氫過氧化物系統,減少脂質過氧化物的形成,增強機體抗氧化損傷能力。
谷胱甘肽過氧化物酶檢測試劑盒(Glutathione Peroxidase AssayKit)是一種以過氧化氫為底物,通過比色法檢測細胞、組織或其它樣品中谷胱甘肽過氧化物酶活性的試劑盒。絕大部分細胞內的谷胱甘肽過氧化物酶都是含硒的,且硒為該酶的活性中性組成部分。細胞內也有棲少量的不含硒的谷胱甘肽過氧化物酶存在。本試劑盒檢測的是最常見的含硒的谷胱甘肽過氧化物酶,該檢測法的缺點谷胱甘肽過氧化物酶可以利用還原型谷胱甘肽(GSH)催化過氧化氫以及許多有機過氧化物,產生水或有機醇,在特殊情況下會影響檢測準確性。硒是GSH-Px的必須組成部分,每分子該酶含有含有四分子硒,該酶的活性中心是硒半胱氨酸,測定該酶的活力可以衡量有機體硒水平。其檢測原理是:GSH-Px可催化谷胱甘肽(GSH)與苯甲酸顯色液發生氧化反應,使之生成黃色陰離子,通過分光光度計或酶標儀檢測422nm處吸光度值測定該陰離子的濃度,間接推算GSH減少的量。本試劑盒僅用于科研領域,不宜用于臨床診斷或其他用途。
產品組成:
產品名稱 | 50T | 100T | 保存條件 |
試劑(A): 樣品勻漿液 | 50ml | 100ml | 室溫 |
試劑(B): GSH | 15.4mg | 30.8mg | -20℃,避光 |
試劑(C): GSH 配制液 | 10ml | 20ml | 2-8℃ |
試劑(D): 氧化劑 | 2×1ml | 2×1ml | 室溫 |
試劑(E): 酸性沉淀液 | 100ml | 200ml | 室溫 |
試劑(F): GSH-Px assay buffer | 62.5ml | 125ml | 室溫 |
試劑(G): 苯甲酸顯色液 | 15ml | 30ml | -20℃,避光 |
試劑(H): ddH2O | 50ml | 100ml | -20℃,避光 |
自備材料:
1. 生理鹽水或PBS
2. 離心管、小試管或96孔板
3. 分光光度計或酶標儀
4. 水浴鍋或恒溫箱
5. 離心機
操作步驟(僅供參考):
1. 樣本處理:
a.血清、血漿樣本:從待測樣本中分理出的血清或血漿不應有溶血,如果含有應去除紅細胞后,直接檢測,如超過檢測范圍,用生理鹽水稀釋后檢測。血清去除紅細胞的簡易方法如下:
用抗凝管收集血液,顛倒混勻。取至少500ul全血,4℃ 3000g離心5min。棄上清,用冰冷的紅細胞沉淀10倍體積的樣品勻漿液重懸沉淀,再同前離心,棄上清。加入約紅細胞沉淀4倍體積的冰冷的ddH20裂解紅細胞。12000g離心5min,取上清。亦可采用紅細胞裂解液去除紅細胞,如ACK紅細胞裂解液等。
b.組織樣本:動物用含有20U/ml heparin的生理鹽水(0.9%NaCl containing20U/ml heparin)灌流清除血液后獲取組織樣品。按照每20mg組織加入200ul樣品勻漿液的比例,用玻璃勻漿器在4℃或冰浴勻漿。4℃,12000g離心10min。取上清用于酶活性的測定。
c.細胞樣本:對于貼壁細胞,由于后續用于酶活性的測定,避免使用胰酶消化細胞。可以使用用細胞刮或EDTA處理細胞收集細胞。細胞用無菌的PBS或生理鹽水洗滌1次。按照每106細胞加入300-500ul勻漿液的比例用玻璃勻漿器在4℃或冰浴勻漿,4℃12000g離心10min,取上清用于酶活性的測定。亦可采用Western及IP細胞裂解液參考相應說明裂解細胞樣品,按照每106細胞加入100-200u1裂解液的比例進行裂解,取上清用于酶活性的測定。
2. GSH工作液的配制:取0.5ml ddH20加入15.4mgGSH或1.0ml ddH20加入30.8mg GSH中,充分溶解開混勻,即獲得GSH儲存液(100mmol/L),立即分裝后-20℃保存。取適量的GSH儲存液(100mmol/L),按GSH配制液:GSH儲存液(100mmol/L)=99:1的比例稀釋至1mmol/L,即為GSH工作液(1mmol/L),該溶液配制好以后可4℃保存1天。
3. 氧化工作液的配制:準確取氧化劑0.1ml加入6.5ml ddH20,即為氧化儲存液(100×),4℃保存。臨用前,準確取氧化儲存液(100×)0.1ml加入10ml ddH2O,即為氧化工作液,4℃保存,1天有效。
4. GSH-Px酶促反應:可參考下表設置檢測反應體系,依次加入試劑:
加入物質 | 空白對照管 | 本底對照管 | 測定管 |
GSH工作液(1mmol/L) | - | 0.2ml | 0.2ml |
待測樣品 | - | - | 0.2ml |
ddH2O | 0.2ml | 0.2ml | - |
混勻,置于37℃水浴5min | |||
氧化工作液(提前37℃預溫) | - | 0.1ml | 0.1ml |
混勻,置于37℃水浴5min | |||
酸性沉淀劑 | 0.8ml | 2ml | 2ml |
3500g離心10min | |||
取上清液 | - | 1ml | 1ml |
5. GSH-Px顯色反應:可參考下表設置檢測反應體系,依次加入試劑:
加入物質 | 空白對照管 | 本底對照管 | 額定管 |
取上清液 | - | 1ml | 1ml |
空白對照 | 1ml | - | - |
GSH檢測緩沖液 | 1.25ml | 1.25ml | 1.25ml |
苯甲酸顯色液 | 0.25ml | 0.25ml | 0.25ml |
②混勻,置于室溫孵育1min。以ddH20調零,用分光光度計或酶標儀檢測422nm處吸光度值,定義為A空白、A本底、A測定。如果用分光光度計,比色杯光徑應為1cm加入的上清量因根據比色杯的最小量程而定;如果用酶標儀,96 孔板每孔應加250ul上清液。
計算:
谷胱甘肽過氧化物酶酶活力單位的定義:1個酶活力單位(lunit)是指在37℃,每1L血清,排除非酶促反應,lmin內可以催化1umo/LGSH氧化所需(減少)的酶量為一個GSH-Px活性單位。
GSH-Px(U/L)=(A本底-A測定-A空白)/(A本底-A空白)×200
注:a、[檢測體系中谷胱甘肽過氧化物酶活力的單位為U/L=mU/ml。
b、「樣品(如組織樣本)中谷胱甘肽過氧化物酶活力1=[檢測體系中谷胱甘肽過氧化物酶活力]×稀釋倍數/樣品中的蛋白濃度]
[樣品中(如組織樣本)谷胱甘肽過氧化物酶活力]的單位為:U/mg或mU/mg蛋白樣品中的蛋白濃度1的單位為:mg/ml。
c、計算示例:樣品的蛋白濃度經測定為05mg/ml,稀釋2倍后進行測定。如果A本底=030,A測定=0.20,A空白=0.003 那么:
檢測體系中谷胱甘肽過氧化物酶活力=(0.30-0.02-0.003)/(0.30-0.003)×200×2=130.6U/L
樣品中谷胱甘肽過氧化物酶活力=130.6U/L×2/(0.5mg/ml)=522.4mU/mg(蛋白)
式中:A空白=空白對照的吸光度值
A本底=本底對照的吸光度值
A測定=待測樣品的吸光度值
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