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供貨周期 | 現貨 | 規格 | 50次;100次;200次 |
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貨號 | 27101-200 | 應用領域 | 醫療衛生,生物產業 |
主要用途 | 純化回收的DNA可直接用于測序、連接和轉化、標記、體外轉錄等分子生物學實驗。 |
瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒
產品貨號:27101
產品規格:200 次
產品簡介:
瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒采用新型硅基質膜技術和試劑配方,通過*的離心吸附柱快速的結合 DNA-洗滌-洗脫步驟即可從 普通或低熔點瓊脂糖凝膠中回收純化 70 bp-30 kb 的 DNA 的片段,溶膠速度快,回收率高。溶膠液中含有 pH 指示 劑,可根據顏色來判斷溶膠回收是否達到適用狀態。每個吸附柱可吸附高達 10μg 的 DNA,同時有效去除引物、 酶、礦物油、瓊脂糖等雜質。純化回收的 DNA 純度及濃度高,完整性好,可直接用于測序、連接和轉化、標記、 體外轉錄等分子生物學實驗。
產品內容:
自備試劑:
使用前 Buffer PW 50 次加入 36ml 無水乙醇/100 次加入 72ml 無水乙醇/200 次加入 144ml 無水乙醇。
操作步驟:
1. 將單一目的 DNA 條帶從瓊脂糖凝膠中切下(盡量切除多余部分),放入干凈的離心管(自備)中,稱量計 算凝膠重量(提前記錄離心管重量)。
2. 注意:若膠塊的體積過大,可將膠塊切成碎塊。
3. 向膠塊中加入 2 倍體積 Buffer PG(如凝膠重為 100 mg,其體積可視為 200μl,依此類推)。
4. 57℃水浴溫育,其間每隔 2-3 分鐘溫和地上下顛倒離心管,待溶膠液為黃色,以確保膠塊充分溶解。如果還 有未溶的膠塊,可再補加一些溶膠液或繼續放置幾分鐘直至膠塊*溶解。
5. (可選步驟)當回收片段<300 bp 時,應加入 1/2 膠體積的異丙醇,上下顛倒混勻(如凝膠重 100 mg,則加 入 50μl 的異丙醇)。
6. 柱平衡:向已裝入收集管(Collection Tubes)中的吸附柱(Spin Columns)中加入 200μl Buffer PS,12000 rpm 離心 1 分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
7. 將步驟 3 或 4 所得溶液加入到已裝入收集管的吸附柱中,室溫放置 2 分鐘,12000 rpm 離心 1 分鐘,倒掉收 集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
8. 注意:吸附柱容積為 750μl,若樣品體積大于 750μl 可分批加入。
9. 向吸附柱中加入 450 μl Buffer PW(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),12000 rpm 離心 1 分鐘,倒掉收 集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
10. 注意:如果純化的 DNA 用于鹽敏感的實驗(例如平末端連接或直接測序),建議加入 Buffer PW 靜置 2-5 分鐘再離心。
11. 重復步驟 7。
12. 12000 rpm 離心 1 分鐘,倒掉收集管中的廢液。
13. 注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會影響后續的酶促反應(酶切、PCR 等)。
14. 將吸附柱放到一個新的 1.5 ml 離心管(自備)中,向吸附膜中間位置懸空滴加 50μl Buffer EB,室溫放置 2 分鐘。12000 rpm 離心 1 分鐘,收集 DNA 溶液。-20℃保存 DNA。
注意:
1. 為了提高 DNA 的回收量,可將離心得到的溶液重新滴加到吸附柱中,室溫放置 2 分鐘,12000 rpm 離心 1 分鐘。
2. 洗脫體積不應小于 30μl,體積過少會影響回收效率。
3. 回收大于 10 kb 的 DNA的 片段時,Buffer EB 應在 57℃水浴中預熱,可增加回收效率。
備注:
瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒也適用于 PCR 產物的純化回收。在 PCR 反應液中加入等體積的 Buffer PG,充分混勻(對于回收小 于 150bp 的小片段可將溶液的體積增加到 3 倍以提高回收率)接上述步驟 5 進行后續操作。
注意事項:
1. *使用前應按照試劑瓶標簽的說明在 Buffer PW 中加入無水乙醇。
2. 使用前請檢查 Buffer PG,如果出現結晶或者沉淀,可在 37℃水浴中放置 3-5 分鐘,即可恢復澄清。
3. 電泳時建議使用新的電泳緩沖液,避免影響電泳和回收效果;如下一步實驗要求較高,請盡量使用 TAE 電 泳緩沖液。
4. 切膠時,紫外照射時間應盡量短,以免對 DNA 造成損傷。
5. 回收率與初始 DNA 量和洗脫體積有關,初始量越少,洗脫體積越少,回收率越低。
6. 將水浴鍋預熱至 57℃。
7. 所有離心步驟均可室溫下進行。
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